Comparison of Components and Antioxidant Activity between Selenium-enriched and Common Chlorella Extract
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摘要: 为了研究富硒小球藻提取物与普通小球藻提取物基本成分和抗氧化活性的差异及相关性,测定了富硒小球藻和普通小球藻提取物中总氮、总糖、多酚、黄酮、皂苷、总硒、多糖和多糖硒的含量,及其还原Fe3+、清除DPPH·、ABTS+·、羟基自由基(·OH)和超氧阴离子自由基(O2−·)的能力,并分析了成分与抗氧化能力之间的Person相关。结果表明,富硒小球藻提取物中总糖、多酚、黄酮、总硒、多糖和多糖硒含量显著高于普通小球藻提取物(P<0.05),但总氮和皂苷含量显著低于普通小球藻提取物(P<0.05)。富硒小球藻提取物还原Fe3+、清除DPPH·和ABTS+·的活性强于普通小球藻提取物,但清除·OH和O2−·的能力低于普通小球藻提取物。相关性分析表明含氮化合物、总糖、多酚、黄酮、总皂苷、总硒、多糖和多糖硒含量的增加均能在一定程度上增加抗氧化能力(P<0.05)。·OH清除能力与总硒和多糖硒呈显著负相关(P<0.05)。总之,富硒小球藻提取物含有较多的生理活性物质(除含氮化合物和皂苷)和较强的抗氧化活性,具有作为保健食品开发的潜力。Abstract: To investigate the difference of the components and antioxidant activity between the Se-enriched and the common chlorella extract, as well as the correlation between the components and antioxidant activity. This study determined the content of total nitrogen, total sugar, polyphenols, flavonoids, saponins, total selenium, polysaccharide and polysaccharide selenium in selenium-enriched and common chlorella extract and their ability to reduce Fe3+, scavenge DPPH·, ABTS+·, ·OH and O2−·, as well as the correlation between the content and antioxidant capacity. The results showed that compared with common chlorella extract, selenium-enriched chlorella extract contained more content of total sugar, polyphenol, flavonoid, total selenium, polysaccharide and polysaccharide selenium (P<0.05), but less total nitrogen and saponins (P<0.05). The Se-enriched chlorella extract had higher activity in reducing Fe3+ and scavenging DPPH· and ABTS+·, but lower activity in scavenging ·OH and O2−· than that of common chlorella extract. Correlation analysis showed that higher content of nitrogen, total sugar, polyphenols, flavonoids, saponins, total selenium, polysaccharide and polysaccharide selenium could strengthen the antioxidant activity (P<0.05). The ·OH scavenging capacity was negatively correlated with total selenium and polysaccharide selenium (P<0.05). In general, Se-enriched chlorella extract had more physiological active substances (except total nitrogen and saponins) and stronger antioxidant activity, which would provide the potential application for Se-enriched chlorella extract in health food products.
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人体的部分慢性疾病和衰老过程与体内的氧化应激反应相关。氧化应激会激活炎症调节因子NF-κB,促进炎症发生。持续的氧化应激反应会导致机体细胞和组织损伤,称为“自由基疾病”[1]。氧化应激反应还可诱发心血管疾病、阿尔兹海默症甚至癌症[2−3]。有研究报道,活性氧会促进食品酸败,产生异味,并导致质地退化和营养价值降低,进而给人们带来健康风险[3−4],因此活性氧的清除显得尤为重要。通过天然抗氧化物清除活性氧是一种简单、廉价且行之有效的方法[5−6]。如今,越来越多的科学工作者积极开展天然抗氧化物的分离,提纯,鉴定研究[3,7]。
硒是人类、动物和某些微生物必需的微量元素,具有调节人体免疫、延缓衰老和抗癌等作用[8]。硒本身具有较强抗氧化活性[9],有研究表明,植物产品或提取物可以通过富硒来增强抗氧化能力[9−10]。由于生物硒的低毒性和高生物利用率,目前对富硒食品的开发和利用主要集中在天然富硒化合物提取[11]。藻类提取物的抗氧化特性是当前研究热点之一[12−13]。藻类提取物具有较好的抗氧化活性,其中小球藻提取物的抗氧化活性高于豌豆、藜麦、黑豆等提取物[14],且小球藻具有较强富硒能力,富集的硒具有较高生物有效性[15],对急性肝损伤有一定治疗和预防作用[16]。但关于富硒对小球藻抗氧化能力的影响鲜有研究。因此,本文测定了富硒小球藻和普通小球藻提取物的DPPH·、ABTS+·、·OH和O2−·清除能力和总铁离子还原力,以比较富硒小球藻提取物与普通小球藻提取物抗氧化活性差异,以期为富硒小球藻或其提取物的开发利用提供一定理论基础。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
富硒小球藻提取物(水分含量11.3%)、普通小球藻提取物(水分含量12.7%) 圣硒植物科技有限公司;芦丁 西亚公司;纤维素酶(50 U/mg)、果胶酶(50 U/mg)、蛋白酶(150 U/mg) BR级,上海源叶生物科技有限公司;苯酚、冰醋酸、福林酚、过硫酸钾、过氧化氢、邻苯三酚、无水磷酸二氢钾、无水磷酸氢二钾、硫酸、硫酸钾、硫酸铜、没食子酸、氢氧化钠、三氯化铁、无水醋酸钠、硝酸铝、亚硝酸钠 国药集团化学试剂有限公司;葡萄糖 Sigma公司;ABTS(2,2’-二氮(3-乙基苯并噻唑-6-磺酸)二铵盐)、TPTZ(2,4,6-三(2-吡啶基)-1,3,5-三嗪)、Trolox(6-羟基-2,5,7,8-四甲基苯并二氢吡喃-2-甲酸) 东京化成工业株式会社;DPPH(1,1-二苯基-2-三硝基苯肼) 山东西亚化学工业有限公司;齐墩果酸 上海源叶生物科技有限公司;香草醛 天津光复精细化工研究所;硫酸亚铁 天津市北方天医化学试剂厂;三羟甲基氨基甲烷(Tris) 天津市博迪化工有限公司;高氯酸 天津市东方化工厂;水杨酸 天津市福晨化学试剂厂;无水碳酸钠 天津市永大化学试剂开发中心;硼酸、无水乙醇、盐酸 武汉市中天化中有限责任公司;上述试剂均为AR级。
Infinite M200 Pro多功能酶标仪 瑞士帝肯公司;RC-HH-6 数显恒温水浴锅 北京睿诚永创科技有限公司;GL224I-1SCN 电子天平 赛多利斯科学仪器(北京)有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 富硒或普通小球藻提取物的制备
小球藻粉末与水按质量比1:4进行混合,搅拌均匀并浸泡30 min,使小球藻充分吸水。然后用30%的磷酸溶液调节pH为4.0±0.2。加入纤维素酶(4.0 g/kg干料)、果胶酶(0.05 g/kg干料)、蛋白酶(0.05 g/kg干料),在48~50 ℃条件下酶解2 h。酶解结束后升温至70 ℃并快速搅拌30 min,使酶解更充分。再升温至90~100 ℃并保持2 h,同时全力开启搅拌乳化泵,将酶灭活。灭活后的提取液装入离心管,室温(25 ℃)4000 r/min离心30 min后收集上清液,固体进行重复提取。将两次得到的提取液合并添加适量麦芽糊精,搅拌均匀后进行喷雾干燥。干燥得到的提取物粉末密封保存以用于后续实验。
1.2.2 总氮含量的测定
称取100 mg普通或富硒小球藻提取物粉末用蒸馏水定溶于10 mL容量瓶,得到10 mg/mL的样品溶液。取5 mL样液用凯氏定氮法测定总氮含量[17]。
1.2.3 总糖含量和多糖含量测定
采用苯酚硫酸法测定样品溶液中总糖含量[17]。以葡萄糖为标准品在490 nm测定吸光度并计算样品中总糖含量。提取液加入无水乙醇使最终乙醇浓度为80%,4 ℃静置过夜后4000 r/min离心得沉淀,将沉淀用无水乙醇洗两次得到多糖,得到的多糖同样用苯酚硫酸法测定并计算提取液中的多糖浓度。
1.2.4 多酚含量测定
采用福林-酚法测定样品溶液中多酚含量[17]。以没食子酸为标准品于波长765 nm处测定吸光度,并计算样品中多酚含量。
1.2.5 总黄酮含量测定
采用亚硝酸钠-硝酸铝体系测定样品溶液中的总黄酮含量[17]。以芦丁为标准品在波长510 nm处测定吸光度,并计算样品中总黄酮含量。
1.2.6 总皂苷含量测定
采用香草醛-高氯酸法测定总皂苷含量[18]。以齐墩果酸为标准品,在560 nm处测定吸光度,并计算标准曲线和样品中总皂苷含量。
1.2.7 总硒和多糖硒含量测定
总硒测定:取0.2 mL样液加入8 mL硝酸和2 mL高氯酸浸泡过液后,先120 ℃消化60 min,后170 ℃消化至2 mL透明溶液。待溶液冷却后加入2.5 mL盐酸(6 mol/L)并于100 ℃还原10 min,最后冷却至室温,用超纯水定容至25 mL,同时配制硒标液,采用原子荧光法测定并计算样液中总硒含量[17]。
多糖硒测定:取50 mL样品溶液(10 mg/mL),200 mL无水乙醇于4 ℃冰箱中冷藏过夜,然后4000 r/min离心10 min取沉淀,得到的沉淀用无水乙醇洗两次后烘干并记下重量,取10 mg干燥样品按总硒法测定多糖硒。
1.2.8 FRAP法测定抗氧化能力
将1.2.2中得到的样品(10 mg/mL)用蒸馏水稀释成不同浓度(0.4、0.8、1.2、1.6和2.0 mg/mL)进行抗氧化活性实验。将300 mmol/L、pH3.6的醋酸缓冲液、10 mmol/L TPTZ溶液和20 mmol/L三氯化铁溶液以体积比10:1:1配制成FRAP工作液。分别取150 μL FRAP工作液和50 μL样液于酶标板中,37 ℃孵育10 min后于593 nm波长处测定吸光度,同时以蒸馏水为对照,以Trolox标准液做标准曲线:y=10.709x+0.0183,R2=0.9977,并计算不同浓度下小藻提取物的总铁离子还原能力[19]。
1.2.9 DPPH法测定抗氧化能力
取DPPH(5.0 mg)溶于用30 mL 70%乙醇中,超声溶解5 min后转入50 mL容量瓶中,用70%乙醇定容得DPPH工作液,取DPPH溶液(100 μL)于酶标板中,再加入100 μL不同浓度样液,混匀静置30 min后测定520 nm处吸光度,同时测定样品底物吸光度[17]。每个样品重复3次。DPPH·清除率的计算如公式(1)。
DPPH⋅清除率(%)=(1−A1−A2A0)×100 (1) 式中:A0为空白对照液的吸光度;A1为加入样品后的吸光度;A2为提取液的吸光度。
1.2.10 ABTS法测定抗氧化能力
将浓度为7 mmol/L ABTS溶液和2.45 mmol/L过硫酸钾溶液等体积混合,室温25 ℃避光反应12~16 h,制备 ABTS储备液。使用磷酸盐缓冲液(10 mmol/L,pH7.4)将储备液稀释至适宜吸光度,备用。取各浓度样品50 μL,加入150 μL ABTS溶液,于暗处反应5 min,测定其在734 nm处的吸光度[18]。以蒸馏水代替样品作为空白。每个样品重复3次。ABTS+·清除率的计算如公式(2)。
ABTS+⋅清除率(%)=(1−A1−A2A0)×100 (2) 式中:A0为空白对照液的吸光度;A1为加入样品后的吸光度;A2为提取液的吸光度。
1.2.11 水杨酸法测定抗氧化能力
在比色管中依次加入20 μL FeSO4(9 mmol/L),20 μL乙醇-水杨酸(9 mmol/L),100 μL的不同浓度样液,40 μL蒸馏水和20 μL H2O2(8.8 mmol/L)。37 ℃孵育15 min后于510 nm测吸光度[20−21]。同时测定参比溶液,参比溶液为不加双氧水的体系。每个样品重复3次。清除率的计算如公式(3)。
清除率(%)=(1−A1−A2A0)×100 (3) 式中:A0为空白对照液的吸光度(以蒸馏水代替样品);A1为加入样品后的吸光度;A2为不加显色剂H2O2的吸光度(以蒸馏水代替双氧水)。
1.2.12 邻苯三酚自氧化法测定抗氧化能力
在酶标板中依次加入60 μL的Tris缓冲液(0.05 mol/L,pH=8.2)、100 μL不同浓度的样液和20 μL邻苯三酚(3 mmol/L),以蒸馏水为对照,反应5 min后加入20 μL盐酸终止反应,于波长300 nm测吸光度[22−23]。每个样品重复3次。清除率的计算如公式(4)。
清除率(%)=(1−A1−A2A0)×100 (4) 式中:A0为空白对照液的吸光度(以蒸馏水代替样品);A1为加入样品后的吸光度;A2为不加显色剂邻苯三酚的吸光度(以蒸馏水代替邻苯三酚)。
1.3 数据处理
所有实验均重复三次。采用SPSS 21.0软件对实验数据进行处理分析;采用Duncan法进行差异显著性分析,P<0.05表示差异显著。采用GraphPad Prism 9.0 进行绘图。
2. 结果与分析
2.1 富硒或普通小球藻提取物中基本化学成分
实验分析了普通小球藻和富硒小球藻的化学成分并进行差异性分析,结果见表1。富硒小球藻提取物和普通小球藻提取中各化学成分含量具有明显差异,普通小球藻提取物中氮含量和总皂苷含量显著高于富硒小球藻提取物(P<0.05),含氮化合物主要为各类蛋白质,也包含少量脱氧核糖和生物碱等物质。普通小球藻提取物中总糖、多酚、黄酮、总硒、多糖和多糖硒显著低于富硒小球藻(P<0.05)。两种小球藻中化学成分含量的差异可能与富硒培养有关。有研究表明富硒培养会影响植物体内物质与能量的合成与代谢[24−25],导致物质含量差异[17,24]。
表 1 两种小球藻提取物中各化学成分的含量Table 1. Contents of compound in extract of Se-enriched chlorella and common chlorella样品 氮含量(mg/mL) 总糖(mg/mL) 多酚(mg/mL) 黄酮(mg/mL) 总皂苷(mg/mL) 总硒(μg/mL) 多糖(mg/mL) 多糖硒(μg/g) 普通小球藻提取物 0.41±0.00b 1.45±0.19a 0.04±0.00a 0.09±0.01a 1.29±0.01b 0.10±0.04a 0.76±0.11a 15.82±2.95a 富硒小球藻提取物 0.09±0.01a 8.13±0.11b 0.06±0.00b 0.11±0.01b 1.16±0.01a 33.44±0.25b 1.55±0.06b 461.55±0.37b 注:不同字母表示差异显著(P<0.05)。 2.2 富硒和普通小球藻提取物抗氧化能力
抗氧化活性可通过DPPH法、ABTS法、邻苯三酚自氧化法和FRAP法等方法进行测定,不同的测定方法作用机制不同,因此通过不同方法测定出的抗氧化结果可能有所差异[21]。富硒或普通小球藻提取物还原Fe3+,清除DPPH·、ABTS+·、·OH或O2−·的能力如图1~图5。
FRAP法基于电子转移测定抗氧化剂的抗氧化活性[19]。图1为不同浓度富硒或普通小球藻提取物还原Fe3+的能力。在0.4~2.0 mg/mL范围内,富硒小球藻提取物对Fe3+的还原能力线性增加。在0.4~1.6 mg/mL范围内,普通小球藻提取物对Fe3+的还原能力同样增加了,但当普通小球藻提取物浓度大于1.6 mg/mL后,继续增加样品浓度,对Fe3+还原能力影响不显著(P>0.05)。在相同浓度下,富硒小球藻提取物还原Fe3+的能力显著高于普通小球藻提取物(P<0.05)。
DPPH·是一种稳定的自由基,在乙醇溶液中显紫色,可以接受抗氧化剂提供的氢原子而使颜色变浅,从而测定抗氧化剂的抗氧化能力[20−21]。两种小球藻提取物清除DPPH·的能力如图2。从图2中可以看出富硒小球藻提取物浓度较低时,抗氧化能力随浓度的增加而缓慢上升(P<0.05)。当富硒小球藻提取物浓度为1.2~2.0 mg/mL时,清除DPPH·的能力不再显著增加(P>0.05)。普通小球藻提取物浓度在0.4~2.0 mg/mL之间时清除DPPH·的能力无显著差异(P>0.05)。当提取物浓度相同时,富硒小球藻提取物清除DPPH·的能力显著高于普通小球藻提取物(P<0.05)。
ABTS可被过硫酸钾氧化成ABTS+·,抗氧化剂通过提供质子以清除ABTS+·,达到抗氧化的目的[21,26]。从图3看出,富硒和普通小球藻提取物清除ABTS+·的能力均随浓度增加而显著上升(P<0.05),且富硒小球藻清除ABTS+·的能力要显著强于普通小球藻提取物(P<0.05)。
羟自由基清除法可测定抗氧化剂清除·OH的能力[22]。小球藻提取物对·OH的清除能力如图4。从图中可以看出,富硒和普通小球藻提取物清除·OH的能力均随底物浓度增加而显著上升(P<0.05)。普通小球藻提取物随浓度增加,清除·OH的能力先迅速增加而后增加速率逐渐降低。富硒小球藻提取物清除·OH的能力在浓度范围内呈线性关系,但清除能力显著低于普通小球藻提取物(P<0.05)。
通过邻苯三酚自氧化法可获得超氧阴离子,样品的抗氧化能力可通过清除O2−·来表示[22−23]。两种小球藻提取物清除O2−·的能力如图5。从图5中看出,富硒小球藻提取物清除O2−·的能力受浓度影响较小,在0.4~2.0 mg/mL内没有发生显著改变(P>0.05)。普通小球藻提取物清除O2−·的能力随浓度增加而增加(P<0.05)。当浓度达到1.6 mg/mL后,继续增加富硒小球藻提取物,O2−·清除率变化不显著(P>0.05);当浓度≥1.6 mg/mL时,普通小球藻提取物清除O2−·的能力显著高于富硒小球藻提取物(P<0.05)。
自由基是含有未配对电子的原子、分子或离子,它们高度不稳定,并且能活跃地与其它分子产生化学反应[27]。正常情况下生物体内自由基的产生与抗氧化维持一个平衡状态[28]。当这种平衡被打破后,过量的自由基可能导致机体氧化损伤并破坏细胞功能,并进一步通过破坏DNA、RNA、蛋白质和脂质,导致细胞死亡[29−30]。摄入外源抗氧化剂是增强机体保护的一种途径[31]。一些生物基本成分如还原糖[32]、含氮化合物[33]、多酚[33−34]、黄酮[34−35]、皂苷[32]、硒[36−37]、硒多糖[36−37]以及硒化蛋白[38]等均具有抗氧化活性。富硒小球藻提取物和普通小球藻提取物中均含有一定浓度的含氮化合物、总糖、多酚、黄酮、皂苷、总硒和多糖等物质(表1),导致两种小球藻提取物能在一定程度上还原Fe3+、清除DPPH·、ABTS+·、·OH和O2−·。小球藻提取物对不同自由基清除能力的差异,可能与自由基的分子状态或活性有关[19]。此外,在同一种抗氧化测定方法中,两种小球藻的抗氧化能力有所差异,这是由于两种小球藻提取物中各物质含量不同。为进一步探究小球藻提取物中各物质对抗氧化特性的影响,采用Pearson相关分析小球藻提取物中各物质与抗氧化特性间的相关性。
2.3 相关性分析
Pearson相关分析可以简洁直观的反应两个变量间的线性关系[39]。从表2可以看出,Fe3+还原能力与总糖、多酚、黄酮、总硒、多糖和多糖硒含量呈极显著正相关(P<0.01)。DPPH·清除能力与总糖、总硒、多糖和多糖硒含量呈极显著正相关(P<0.01)。ABTS+·清除能力与总糖、多酚、黄酮、皂苷、总硒、多糖和多糖硒含量呈极显著正相关(P<0.01)。·OH清除能力与总氮呈极显著正相关(P<0.01),与总硒和多糖硒呈显著负相关(P<0.05)。O2−·清除能力与总氮和皂苷含量呈极显著(P<0.01)或显著(P<0.05)正相关。
表 2 化学成分与抗氧化特性的Pearson相关分析Table 2. Pearson correlation analysis between compounds and antioxidant activity成分 Fe3+还原
能力DPPH·
清除能力ABTS+·
清除能力·OH清除
能力O2−·清除
能力总氮 −0.327 −0.581 0.164 0.963** 0.911** 总糖 0.993** 0.922** 0.819** −0.560 −0.223 多酚 0.836** 0.581 0.985** 0.059 0.383 黄酮 0.789** 0.522 0.975** 0.140 0.451 皂苷 0.496 0.204 0.842** 0.499 0.726* 总硒 0.970** 0.953** 0.731** −0.669* −0.350 多糖 0.967** 0.783** 0.956** −0.258 0.091 多糖硒 0.972** 0.951** 0.738* −0.662* −0.341 注:*表示差异显著相关(P<0.05),**表示极显著相关(P<0.01)。 众所周知,多酚[33,40]、黄酮[33,35]和皂甙[32−31]都是生物活性物质,具有较强的抗氧化能力,因此这些物质都与抗氧化能力存在显著正相关。另外,一些含氮化合物,如多肽和抗氧化物酶等都具有较好的抗氧化活性[38,41],这些含氮化合物与小球藻提取物的·OH和O2−·清除能力显著正相关。此外,多糖是一类具有一定抗氧化活性的生物活性物质[42]。而硒与多糖结合形成的硒多糖具有更强的抗氧化活性[36−37,43],这是由于硒与多糖结合可以形成氢硒基或硒酸酯基团,导致多糖中异构碳上的氢原子更加活跃,贡献氢原子的能力更强[44−45]。因此,总硒、多糖和多糖硒与Fe3+还原、DPPH·和ABTS+·清除能力呈显著(P<0.05)或极显著(P<0.01)正相关,即富硒小球藻提取物较高的还原Fe3+和清除DPPH·及ABTS+·能力可能与较高的硒和多糖硒含量有关。然而,也有研究报道富硒培养的植物提取物清除ABTS+·和DPPH·的能力弱于无硒培养的植物提取物[46]。此外,硒多糖浓度较低时,增加硒多糖浓度有利于增加体外抗氧化活性,而浓度过高的硒多糖反而会降低·OH和O2−·的清除能力[47],这与过量的硒或硒化物可诱导产生大量活性氧自由基或引起活性氧自由基的积累,导致体外抗氧化能力下降有关[48−49]。在植物体内,过量的硒也会诱导细胞膜系统的脂质过氧化损伤,造成活性氧自由基含量升高,抗氧化能力下降[41,49]。因此可能由于富硒小球藻提取物中的硒和多糖硒含量远高于普通小球藻提取物(表1),在一定程度上促进了·OH的产生或抑制了对·OH的清除,导致富硒小球藻提取物清除·OH的能力低于普通小球藻提取物(图4),以及·OH清除能力与硒和多糖硒呈显著负相关(P<0.01)(表2)。
3. 结论
植物富硒可能会对植物体内的化学组分和抗氧化特性造成一定影响,相较于普通小球藻,富硒小球藻提取物中含有更多总糖、多酚、黄酮、总硒、多糖和多糖硒而含有较少含氮化合物和皂苷。两种小球藻提取物的抗氧化能力与抗氧化测定方法和提取物浓度有关,并且富硒小球藻提取物还原Fe3+、清除DPPH·和ABTS+·活性强于普通小球藻提取物,但清除·OH和O2−·的能力低于普通小球藻提取物。相关性分析表明总氮、总糖、多酚、黄酮、皂苷、总硒、多糖或多糖硒均能与某一抗氧化指标呈显著或极显著正相关,然而总硒和多糖硒与·OH清除能力呈显著负相关。综上,富硒改变了小球藻提取物中化学成分含量以及抗氧化特性,本研究有助于为富硒小球藻提取物的开发利用提供理论基础。
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表 1 两种小球藻提取物中各化学成分的含量
Table 1 Contents of compound in extract of Se-enriched chlorella and common chlorella
样品 氮含量(mg/mL) 总糖(mg/mL) 多酚(mg/mL) 黄酮(mg/mL) 总皂苷(mg/mL) 总硒(μg/mL) 多糖(mg/mL) 多糖硒(μg/g) 普通小球藻提取物 0.41±0.00b 1.45±0.19a 0.04±0.00a 0.09±0.01a 1.29±0.01b 0.10±0.04a 0.76±0.11a 15.82±2.95a 富硒小球藻提取物 0.09±0.01a 8.13±0.11b 0.06±0.00b 0.11±0.01b 1.16±0.01a 33.44±0.25b 1.55±0.06b 461.55±0.37b 注:不同字母表示差异显著(P<0.05)。 表 2 化学成分与抗氧化特性的Pearson相关分析
Table 2 Pearson correlation analysis between compounds and antioxidant activity
成分 Fe3+还原
能力DPPH·
清除能力ABTS+·
清除能力·OH清除
能力O2−·清除
能力总氮 −0.327 −0.581 0.164 0.963** 0.911** 总糖 0.993** 0.922** 0.819** −0.560 −0.223 多酚 0.836** 0.581 0.985** 0.059 0.383 黄酮 0.789** 0.522 0.975** 0.140 0.451 皂苷 0.496 0.204 0.842** 0.499 0.726* 总硒 0.970** 0.953** 0.731** −0.669* −0.350 多糖 0.967** 0.783** 0.956** −0.258 0.091 多糖硒 0.972** 0.951** 0.738* −0.662* −0.341 注:*表示差异显著相关(P<0.05),**表示极显著相关(P<0.01)。 -
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