Impact of Supplement of Lactobacillus casei K17 on Fillet Tastes of Largemouth Bass Micropterus salmoides
-
摘要: 为改善饲喂加州鲈鱼肌肉的滋味，研究了添加干酪乳杆菌K17的饲料对加州鲈鱼肌肉滋味物质的影响。试验分为6组：含1×108CFU/g干酪乳杆菌K17的饲料组（LB），含10％脱脂乳粉保护的1×108CFU/g干酪乳杆菌K17的饲料组（MB），含1×108CFU/g热灭活干酪乳杆菌K17的饲料组（DB），含发酵上清液的饲料组（FS）、含10％脱脂乳粉的饲料组（MG）及含0.85％生理盐水的饲料组（SG）。实验结束后，利用电子舌测定了不同处理组样本的整体滋味差异，并分析了其呈味氨基酸和呈味核苷酸的含量。结果显示，通过电子舌主成分分析和判别因子分析，可将6组的差异性进行有效区分；采用雷达图能将各组鲜味、苦味和甜味大小区分。6组加州鲈鱼肌肉中检测出16种游离氨基酸。MB组鲜味氨基酸总量和天冬氨酸含量，FS组缬氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、苯丙氨酸含量和苦味氨基酸总量和MG组的必需氨基酸总量显著高于对照组SG（P<0.05）。MB组的味精当量（Equivalent umami concentrations，EUC）增加最明显，与对照组相比差异显著（P<0.05），6组EUC的大小为MB>FS>DB>LB>MG>SG，与电子舌预测结果基本一致。以上研究表明，饲喂不同剂型干酪乳杆菌K17对加州鲈鱼滋味成分和含量的影响存在一定差异， MB组对加州鲈鱼肌肉整体滋味贡献最大，这可为其在加州鲈鱼中应用提供理论依据。Abstract: Impact of supplement ofLactobacillus casei K17 on fillet tastes of largemouth bass Micropterus salmoides were researched for improving its fillet tastes. The M. salmoides was given commercial feed supplemented with live L. casei K17 (1×108 CFU/g), live L. casei K17 protected by skim milk powder (10%), heat-killed dead L. casei K17, its fermentation supernatant, skim milk powder (10%), and saline (0.85% NaCl), designated as LB, MB, DB, FS, MG, and SG, respectively. At the end of the trial, the outline of the whole taste difference of each group was determined by using the electronic tongue. The contents of free amino acids and flavor nucleotides were analyzed. The results showed that the electronic tongue adopted discriminant factor analysis based on principal component analysis, the difference of six groups could be effectively distinguished, and the umami, bitter and sweet taste of each group could be effectively distinguished by using radar map. Sixteen free amino acids were detected from the fillet of six groups. Total umami amino acids and aspartic acid (Asp) in the MB group, the valine (Val), isoleucine (Ile), leucine (Leu), phenylalanine (Phe) and total bitter amino acids in the FS group, and the total essential amino acids in the MG group were significantly higher than those in the control SG group (P<0.05). Combined with equivalent umami concentrations (EUC), MB group had the most significant increase in EUC compared with the control group, and the order was MB>FS>DB>LB>MG>SG. Consistent with the predicted results of the electronic tongue, EUC was recommended to quantify the umami of fish fillet. These results showed the fillet taste compositions and contents of M. salmoides fed with different L. casei K17 diets were improved obviously compared with the control group, especially LB and MB, which could provide a useful theoretical reference for further development and utilization of M. salmoides.
-
Keywords:
- Lactobacillus casei /
- Micropterus salmoides /
- free amino acids /
- flaver /
- flavor nucleotides
-
随着加州鲈鱼养殖密度的增加，其肌肉品质随之下降[1]。在加州鲈鱼小分子滋味成分中，氨基酸、核苷酸等[2]是最主要的成分，各种滋味物质之间相互影响，共同形成了加州鲈鱼的独特滋味。为适应消费者和市场需求，改善养殖加州鲈鱼肉质滋味，提高肌肉游离氨基酸、核苷酸含量，进一步改善加州鲈鱼的营养品质具有重要意义[3]。
养殖的加州鲈鱼肌肉的品质受饲料种类和摄入量的影响，肌肉品质主要由饲料的质量决定[4]。研究表明，改变饲料中蛋白源、脂肪源等营养成分或添加饲料添加剂对鱼肌肉质构和肌肉中游离氨基酸、核苷酸、胶原蛋白等营养成分有一定的改善作用[5-8]。近年来，乳杆菌、芽孢杆菌等益生菌作为饲料添加剂在加州鲈鱼养殖中备受关注，但其有关研究大多集中在提高鱼类免疫力[9-12]、促进生长[9-12]以及对鱼虾类肌肉中基本营养素含量的调节[5-8]等方面。在饲料中添加芽孢杆菌、酪酸梭菌（Clostridium butyricum）、植物乳杆菌（Lactobacillus plantarum）等益生菌对动物肌肉的咀嚼性、持水性和硬度等质构特性和营养成分（如脂肪酸含量组成）等方面有改善作用[13-14]，例如，曹洪忠等报道，通过饲料中添加β-葡聚糖和枯草芽孢杆菌喂养彭泽鲫70 d，明显改善了它肉质的硬度、弹性、粘聚性、无胶性、咀嚼性和恢复力[15]。杨刚等也报道饲料中添加109 CFU/kg的枯草芽孢杆菌喂养鲫鱼70 d，显著改善了鲫鱼的抗氧化能力，提升了肉质的硬度、无胶性、咀嚼性和恢复力[15]。同时夏雨等研究证明饲料中添加3株植物乳杆菌和3株副干酪乳杆菌饲养凡纳滨对虾幼虾28 d，3株植物乳杆菌显著地改善了肌肉弹性和咀嚼性，3株副干酪乳杆菌能显著改善肌肉的脂肪酸组成[5]。
饲料中添加抗氧化剂羟脯氨酸改善了大黄鱼的肉质，提高了大黄鱼的抗氧化酶活性，进而促进了胶原蛋白的合成，并且其肉质的硬度、弹性和咀嚼性与肌肉中总胶原蛋白有显著正相关性[16]。Kalavathy等[17]研究发现，鸡饲料中添加4种不同乳杆菌混合物能增加不饱和脂肪酸含量，减少胆固醇水平。肉质中增加的不饱和脂肪酸可能是因为饲料中添加的抗氧化剂保护的效果，因为这些抗氧化剂作为电子供体，为某些不饱和脂肪酸的还原提供了电子[18]。可见饲料中添加抗氧化剂可以改善肉质的质构和滋味。实验室前期从传统发酵食品朝鲜泡菜中筛选出一种体外抗氧化性较强的干酪乳杆菌K17[19]，将不同剂型干酪乳杆菌K17添加到加州鲈鱼饲料中，发现干酪乳杆菌K17能增强加州鲈鱼体内抗氧化性，调节加州鲈鱼肠道菌群结构和代谢功能[20]，并能促进加州鲈鱼快速生长且改善其肝脏健康和肉质[21]。目前还未有报道干酪乳杆菌对鱼类滋味物质影响的研究。本实验将具有较强抗氧化性的干酪乳杆菌K17添加到加州鲈鱼饲料中喂养69 d后，分析其对加州鲈鱼肌肉中呈味氨基酸及呈味核苷酸之间的影响，对它们的组成及含量进行分析，并计算其味道强度值（Taste active values, TAV）和味精当量（Equivalent umami concentrations, EUC），同时借助电子舌，探究饲喂干酪乳杆菌K17对滋味物质的影响，为益生菌在加州鲈鱼养殖中的应用提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
加州鲈鱼（100日龄） 湖州市胖子淡水鱼繁殖基地；干酪乳杆菌K17 实验室保存；饲料，浙江东裕生物科技有限公司；三氯乙酸、高氯酸、磷酸氢二钾、磷酸二氢钾、三氯叔丁醇、NaOH、KOH 均为分析纯，国药集团化学试剂有限公司；肌苷酸（Inosinic acid，IMP）、腺苷酸（Adenosine monophosphate，AMP）和鸟苷酸（Guanylic acid，GMP）标注溶液（三者纯度均不小于99%）、氨基酸混合标准溶液 美国Sigma-Aldrich公司。
SB25-12DT超声清洗仪 宁波新艺超声设备有限公司；FJ200-SH数显高速分散均质机 上海标本模型厂；PL2002梅特勒-托利多精密天平 METTLER TOLEDO，Zurich，瑞士；5424高速冷冻离心机 Eppendorf，Hamburg，德国；L-8800氨基酸全自动分析仪 日本Hitachi公司；W2690/5高效液相色谱仪 美国Waters公司；ASTREE电子舌 法国Alpha MOS公司。
1.2 实验方法
1.2.1 实验饲料制备
在本研究中，商业饲料被用作饲喂加州鲈鱼的基础饲料。根据先前描述的方法制备了六种实验饲料（表1）[22]。从实验室冻存管中接种干酪乳杆菌K17到5 mL无菌MRS培养基中，在37 ℃下厌氧培养18 h至对数生长中期，随后，在4 ℃条件下3000×g离心10 min收集其细胞，用无菌氯化钠（0.85%）将细胞沉淀洗涤两次，并将其稀释至1×109 CFU/mL（使用菌落计数法测定）[23]。同时，将上清液用0.22 μm孔径过滤器除去残留的细菌细胞，得到的上清液用作FS组添加物。将1×109 CFU/mL活细胞菌液在65 ℃下加热30 min，得到热灭活的干酪乳杆菌K17细胞，用作DB组添加物。然后将1×109 CFU/mL活细胞菌液添加10%脱脂奶粉[24]，作为MB添加物。将得到的30 mL干酪乳杆菌K17菌液在超净工作台中的无菌矩形托盘中分别均匀地喷涂到300 g基础饲料中，用无菌采样袋封装后在4 ℃下储存，并在7 d内使用完。每周使用菌落计数法检查制备的饲料中的干酪乳杆菌K17浓度[23]。FS、MG和SG饲料制备方法与上述相同。
表 1 本研究中饲喂加州鲈鱼的六种试验饲料Table 1. Six experimental diets for feeding M.salmoides in this study处理组 试验饲料（每300 g基础饲料） SG 30 mL氯化钠溶液（0.85%） MG 30 mL脱脂奶粉溶液（10%） LB 30 mL活干酪乳杆菌K17（在0.85%氯化钠溶液中为108 CFU/mL） MB 30 mL活干酪乳杆菌K17（在10%脱脂奶粉溶液中为108 CFU/mL） DB 30 mL热杀死的干酪乳杆菌K17（108 CFU/mL） FS 干酪乳杆菌K17的30 mL发酵上清液 1.2.2 加州鲈鱼的培养条件
参照Wang等[20]方法饲喂加州鲈鱼。将购买的800条加州鲈鱼在中国上海海洋大学水产动物遗传育种中心上海市协同创新中心的三个室内水泥池（5.0 m×3.0 m×1.8 m）中暂养两周，期间采用商业饲料进行饲养。随后，将挑选出来大小均一的450尾加州鲈鱼（平均（33.0±0.5）g）随机分配至18个网箱，网箱大小为1.5 m×1.0 m×1.8 m，每个网箱分配25条。试验设计了六个处理组（表1），每个处理组均进行了三次重复（笼）试验。饲养期间，每天投喂2次（上午06:00~07:30和下午17:00~18:30），饲养试验进行了69 d。每日饲喂量约为加州鲈鱼平均体重的4%，并每周进行调整以确保鱼在饲喂后1 h内吃完分配的饲料，每天记录所消耗的饲料量。
1.2.3 样品采集
在喂养实验完成后，所有处理组的加州鲈鱼被禁食12 h，记录每个网箱中鱼的数量及总重量。从每个网箱中随机挑选3条中等大小的鱼，用丁香酚麻醉至鱼微微侧翻。收集鱼背侧左边的鱼片样本，分析其游离氨基酸和呈味核苷酸含量。
1.2.4 电子舌分析
参考周纷等[25]的方法测定电子舌数据。称取剁碎的鲈鱼背肉（2.00 g）于离心管中，加入25 mL去离子水在均质机中均质2 min以提取水溶性成分，室温静置15 min，4 ℃下以10000 r/min离心（10 min），过滤取上清液定容至100 mL。此后，吸取5 mL该溶液稀释40倍，然后用于电子舌分析。在分析样品之前，对电子舌的传感器进行调节（0.01 mol/L盐酸），校准（0.01 mol/L盐酸）。在成功校准后，对每个时间点背肉样品进行7次分析，主成分分析（Principal Component Analysis, PCA）是取后3次的数据。
1.2.5 游离氨基酸测定
参考付娜等[26]方法测定游离氨基酸。称取样品2.0 g，加入质量分数为15%的三氯乙酸溶液15 mL，匀浆2 min后，静置2 h，以10000 r/min离心（15 min），过滤后取5 mL上清液，调节（3 mol/L的NaOH溶液）pH至2.0，定容至10 mL，摇匀，过0.22 μm膜，滤液上机检测。操作均在4℃条件下进行。氨基酸自动分析仪条件：色谱柱（4.6 mm×150 mm，7μm）；柱温 50 ℃；1 通道流速：0. 4 mL/min，2通道流速：0. 35 mL/min。流动相：柠檬酸钠和柠檬酸的混合缓冲液（pH为3.2、3.3、4.0、4.9）以及茚三酮缓冲液（质量分数为 4%）。
1.2.6 呈味核苷酸测定
参考Chen等[27]方法测定核苷酸。称取样品5.0 g置于50 mL离心管中，加入10 mL质量分数为10%的HClO4，均质（2 min），以10000 r/min离心（15 min），过滤后取上清液。用5 mL质量分数为5%的HClO4洗涤沉淀，再次离心，合并上清液。调节上清液pH（pH=6.5），静置（30 min）迅速定容至50 mL，摇匀，过0.45 μm膜待测。操作均在4 ℃条件下进行。高效液相色谱条件：ODS-SP C18色谱柱（4.6 mm× 250 mm，5 μm），ODS-SP保护柱柱芯（4 mm×10 mm，5 μm）；流动相A为pH是6.5的0.05 mol/LKH2PO4和K2HPO4 （1:1）溶液，流动相B为甲醇溶液，等梯度洗脱（流速1 mL/min）；柱温28 ℃；进样量10 μL；检测波长254 nm。
1.2.7 味道强度值（TAV）和味精当量（EUC）
滋味物质的TAV是滋味物质的绝对浓度值除以它的味道阈值，计算公式如下：TAV=C/T。式中，TAV：味道强度值；C：滋味物质的绝对浓度值，mg/100 g；T：滋味物质的味道阈值，mg/100 g。参照Chen等[27]的方法计算EUC，通过计算鲜味氨基酸和呈味核苷酸的质量分数获得。计算公式如下：EUC =Σaibi+1218（Σaibi）（Σajbj）。式中：EUC按样品所含谷氨酸钠（monosodium glutamate，MSG）质量分数计，%；ai为鲜味氨基酸（Asp、Glu）质量分数，%；bi为鲜味氨基酸相对于MSG的相对鲜度系数（Glu为1，Asp为0.077）；aj为呈味核苷酸（IMP、AMP）质量分数，%；bj呈味核苷酸相对于IMP的相对鲜度系数（IMP为1，AMP为0.18）；1218为协同作用系数。
1.3 数据处理
采用SPSS 22.0版软件进行统计分析，使用单因素方差分析和Duncan新复极差法分析显著性，结果以平均值±标准误差表示，P<0.05[28]。
2. 结果与分析
2.1 电子舌分析
由图1可知，利用电子舌传感器响应值数据建立二维图，进行主成分分析，PC1为63.411%，PC2为32.204%，累计为95.615%，说明PC1和PC2能够反映样品的整体信息。从图1可看出，各处理组与对照组SG分布区域无重叠，说明处理组与对照组的味觉均有一定差异。6组样品中FS组和MB组样品分布区域有点重叠，说明两者在味觉特征上较为相似，不能完全区分，而且两者与对照组分布区域相隔最远，说明两者与对照组差异最明显；DB组、MG组、LB组样品分布区域较为接近，但未重叠，在一定程度下可以区分，说明三组之间味觉有一定差异。提取电子舌各传感器响应值数据进行判别因子分析（Discriminant factor analysis，DFA）。DFA分析是在PCA基础上，对滋味的响应信号数据优化处理，更好地将不同副产物区分开，分析结果由图2所示。六边形的６个点为该组重复样品，第一主成分和第二主成分的累计贡献率达到90.651%，因此可以较全面地代表样品原有信息。另外， LB组和MG组样品与对照组SG组所在区域有所重叠，不易区分，说明LB组和MG组与对照组SG滋味差异较小；MB组、DB组、FS组样品所在区域无重叠，易区分；FS组和MB组分布区域相近，但与对照组SG相距较远，说明FS组和MB组滋味接近且与对照组SG滋味差异最为明显，可能滋味物质的形成与饲料中添加的活菌数和菌落代谢物相关。
![]()
图 1 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉电子舌PCA分析图Figure 1. PCA analysis of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds![]()
图 2 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉电子舌DFA分析图Figure 2. DFA analysis of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds通过电子舌各个传感器的响应值，建立不同样品的滋味雷达图（图3）。从图3中可知，6组样品在苦味（BRS）、复合味1（GPS）、复合味2（SPS）、鲜味（UMS）的差异较明显；酸味（SRS）上几乎无差异，各滋味相对大小排列如下：鲜味（UMS）：MB>DB>FS>LB>MG>SG；甜味（SWS）：MG>LB>DB>FS>MB>SG；苦味（BRS）：FS>MG>MB>LB>DB>SG，SG组在除复合味2（SPS）外的其余6项味觉特征响应值都为最低，这与PCA分析结果类似，说明饲料中添加不同形式干酪乳杆菌K17，对加州鲈鱼滋味有一定影响。
![]()
图 3 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉滋味雷达图Figure 3. Taste radar map of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds2.2 游离氨基酸含量测定
氨基酸可以增强食品的滋味特性，也可以间接参与滋味的形成[29-30]。不同的游离氨基酸之间以及氨基酸与IMP等其他成分之间存在相互协同作用[31]。由表2得知，6组加州鲈鱼肌肉中检测出16种游离氨基酸，Ala在各组均未检出，各组游离氨基酸总量差异不显著。从鲜味氨基酸水平来看，MB组鲜味氨基酸总量和Asp含量显著高于SG组（P<0.05），鲜味氨基酸总量的大小顺序为：MB>DB>FS>LB>MG>SG，与电子舌预测的鲜味顺序一致。从甜味氨基酸来看，Thr、Ser、Pro、Gly和SFA处理组和对照组差异不显著。从苦味氨基酸来看，FS组Val、Ile、Leu、Phe和BRS含量显著高于对照组SG（P<0.05），苦味氨基酸总量的大小顺序为：FS>MG>MB>DB>LB>SG，与电子舌预测的苦味顺序基本一致。
表 2 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸的影响Table 2. Effects of six different groups of Lactobacillus casei K17 feeds on free amino acids in muscle of M. salmoides味道特征 AA SG MG LB MB DB FS 鲜味 Asp 0.077±0.004 0.091±0.018 0.108±0.029 0.176±0.026a 0.154±0.012 a 0.116±0.021 Glu 0.210±0.008 0.229±0.008 0.240±0.013 0.282±0.052 0.268±0.024 0.247±0.028 UMS 0.287±0.012 0.320±0.012 0.347±0.041 0.460±0.070a 0.423±0.038 0.360±0.044 甜味 Thr* 0.645±0.018 1.252±0.268 0.981±0.232 0.803±0.221 0.972±0.190 0.855±0.034 Ser 0.231±0.025 0.369±0.017 0.290±0.067 0.262±0.109 0.282±0.070 0.296±0.014 Pro 0.957±0.130 1.050±0.149 1.697±0.559 1.333±0.250 1.247±0.108 1.873±0.564 Gly 4.565±0.204 5.106±0.262 5.752±0.425 4.577±0.568 4.988±1.175 5.283±0.258 Ala ND ND ND ND ND ND SWS 6.400±0.221 7.777±0.262 8.720±0.036 6.973±1.092 7.487±1.146 8.310±0.428 苦味 Val* 0.096±0.007 0.170±0.020 0.142±0.036 0.159±0.053 0.128±0.020 0.202±0.027a Met* 0.042±0.002 0.063±0.005 0.043±0.010 0.062±0.018 0.047±0.011 0.062±0.003 Ile* 0.069±0.005 0.108±0.006 0.091±0.018 0.106±0.045 0.087±0.006 0.156±0.025a Leu* 0.135±0.004 0.231±0.016 0.200±0.044 0.206±0.075 0.181±0.021 0.274±0.013a Tyr 0.074±0.005 0.074±0.006 0.079±0.017 0.083±0.015 0.071±0.003 0.098±0.024 Phe* 0.192±0.038 0.284±0.007a 0.249±0.011 0.222±0.021 0.196±0.035 0.325±0.030a Lys* 0.179±0.020 0.227±0.015 0.178±0.056 0.212±0.098 0.178±0.021 0.286±0.064 His 1.229±0141 1.860±0.031 1.267±0.144 1.533±0.302 1.404±0.280 1.720±0.110 Arg 0.036±0.003 0.053±0.006 0.042±0.014 0.035±0.012 0.041±0.010 0.053±0.003 BRS 2.052±0.153 3.069±0.045 2.293±0.243 2.617±0.612 2.334±0.372 3.176±0.048a 无味 Cys 0.049±0.001 0.048±0.007 0.046±0.005 0.045±0.009 0.041±0.002 0.051±0.002 FAA 8.790±0.122 11.879±0.378 11.405±0.265 10.097±1.734 10.287±1.514 11.895±0.468 注：ND表示未检出；*：必需氨基酸（EAA）， mg/100 g；a表示与SG组差异显著（P<0.05, n=9）；UMS、SWS、BRS和FAA分别表示鲜味氨基酸、甜味氨基酸、苦味氨基酸和游离氨基酸。 当TAV值大于1时，该物质TAV值与样品的呈味成正比[32]。根据表3，只有Gly与His的TAV值大于1，各组Gly的TAV值都在3以上，各组的His的TAV值都在6以上。Gly为甜味氨基酸，对鱼虾等水产品的鲜味有重要贡献[33-34]。Gly不仅能提供清香甜味，还能减少苦味，并能从食物中除去令人不快的口味[35]。含杂环基团的His被认为是肉香味形成的关键物质[36]。可见，从TAV来看，His和Gly是影响加州鲈鱼肌肉滋味的重要氨基酸。
表 3 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸TAV的影响Table 3. Effects on TAV of free amino acids in muscle of M. salmoides in the six groups氨基酸 滋味贡献 阈值（mg/mL） SG MG LB MB DB FS Asp 鲜/酸（+） 1 0.08 0.09 0.11 0.18 0.15 0.12 Glu 鲜/酸（+） 0.3 0.70 0.76 0.80 0.94 0.89 0.82 Thr 甜（+） 2.6 0.25 0.48 0.38 0.31 0.37 0.33 Ser 甜（+） 1.5 0.15 0.25 0.19 0.17 0.19 0.20 Gly 甜（+） 1.3 3.51 3.93 4.42 3.52 3.84 4.06 Ala 甜（+） 0.6 ND ND ND ND ND ND Val 甜/苦（−） 0.4 0.24 0.43 0.36 0.40 0.32 0.51 Lys 甜/苦（−） 0.5 0.36 0.45 0.36 0.42 0.36 0.57 Pro 甜/苦（+） 3 0.32 0.35 0.57 0.44 0.42 0.62 Met 苦/甜/硫（−） 0.3 0.04 0.06 0.04 0.06 0.05 0.06 Ile 苦（−） 0.9 0.08 0.12 0.10 0.12 0.10 0.17 Leu 苦（−） 1.9 0.07 0.12 0.11 0.11 0.10 0.14 Phe 苦（−） 0.9 0.21 0.32 0.28 0.25 0.22 0.36 His 苦/鲜（−） 0.2 6.15 9.30 6.34 7.67 7.02 8.60 Arg 苦/甜（+） 0.5 0.07 0.11 0.08 0.07 0.08 0.11 注：ND：表示未检出，mg/100 g，n=9。 由图4得知，与对照组相比，各组的必需氨基酸总量与游离氨基酸总量都得到了提升，MG组的必需氨基酸总量为2.33 mg/100 g，增加量最大，且与SG组差异显著（P<0.05），可能是MG组饲料中添加的脱脂奶粉含有丰富的蛋白质，其在鲈鱼体内被充分吸收后转化成必需氨基酸。各处理组游离氨基酸总量虽有一定提升，但是与对照组无显著差异，这与王四新等[37]对于北京黑猪饲喂干酪乳杆菌所测得游离氨基酸总量结果与对照组存在显著（P<0.05）差异不同，这可能是鱼类与畜类的肠道菌群结构不同，益生菌对两种不同的动物作用效果存在差异，此外，也有可能是益生菌种类不同，饲养环境存在差异的结果，有待于进一步研究。
![]()
图 4 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸总量和必需氨基酸总量的影响注：a表示与SG组差异显著（P<0.05，n=3）；EAA：必需氨基酸；AA：氨基酸；FAA：游离氨基酸。Figure 4. Effects on essential amino acid and free amino acids and in muscle of M. salmoides in the six groups2.3 呈味核苷酸、TAV和EUC值测定
核苷酸及其关联化合物是影响水产品滋味的另一类重要成分，其中，GMP、IMP和AMP是典型的呈鲜味的核苷酸[38]，效果优于MSG，并且它们在呈鲜味方面存在协同效应[7]。呈味核苷酸含量见表4。由表3可知，MB组的IMP和GMP值与SG组相比均有显著增加（P<0.05），各组IMP的TAV值大小顺序为MB>DB>MG>LB>FS>SG，GMP的TAV值大小顺序为MB>DB>LB>MG>FS>sSG，且均大于1，说明各组的IMP和GMP对鲈鱼肌肉鲜味有显著贡献，且MB组的鲜味最大，与对照组相比差异明显。因为脱脂奶粉对干酪乳杆菌K17的保护，使其在鲈鱼肠道中存活率最高，产生了一系列的小分子代谢物（包括IMP和GMP），这部分物质进一步被肌肉组织吸收，增加了鲈鱼肌肉的鲜味。MB组AMP含量在100 mg/g以上时，鲜味逐渐增强，甜味逐渐减弱[39]。各组AMP含量均大于100 mg/g，AMP的TAV值均大于1，且FS>DB>MB>MG>LB>SG，说明各组AMP对鲜味特征贡献较大而对甜味特征贡献较弱，且FS组的AMP最大，但各组之间差异不显著。呈味氨基酸与呈味核苷酸同时存在能显著提高食品的鲜味，即产生协同效应。因此为了更加全面地评价加州鲈鱼的鲜味，可采用EUC值来评价鲜味强度[32]。本研究根据6个处理组加州鲈鱼肌肉鲜味氨基酸和呈味核苷酸的数值计算出各组的EUC值，如表4所示。MB组的EUC值最大，与对照组相比差异显著，6组EUC呈现为MB>DB>FS>LB>MG>SG，与电子舌测定大小值一致，可见EUC是量化鱼肌肉鲜度的推荐指标。其中味精呈味阈值为0.03%，MB中EUC为2.93%相当于100 g碎肉和头肉中所具有的鲜味强度相当于2.93 g味精产生的鲜味，其值远高于味精的阈值。结合EUC来看，MB组的EUC增加最明显，且与对照组相比差异显著（P<0.05），其原因可能是添加脱脂奶粉保护剂的干酪乳杆菌，在饲料和进入加州鲈鱼肠道中活菌数更高，该活菌在鱼肠道中能调节肠道中营养物质代谢，进而在鱼体内产生部分鲜味物质，这与在北京黑猪饲料中添加干酪乳杆菌后其鲜味氨基酸总量显著高于未加干酪乳杆菌组的结果一致[37]。综合TAV值与EUC值，MB组的鲜味增强最为明显。
表 4 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉呈味核苷酸、TAV和EUC值的影响Table 4. Effects on taste nucleotides, TAV and EUC in muscle of M. salmoides in the six groups样品 IMP AMP GMP EUC （%） 含量
（mg/100 g）TAV 含量
（mg/100 g）TAV 含量
（mg/100 g）TAV SG 127.12±6.07 5.08 137.01±19.22 2.7 119±7 9.52 1.13±0.13 MG 143.16±13.10 5.72 154.16±10.53 3.08 133±33 10.64 1.64±0.23 LB 142.29±11.35 5.68 148.05±9.33 2.96 145±8 11.6 1.80±0.20 MB 193.50±21.76* 7.74 196.61±30.45 3.93 208±14* 16.64 2.93±0.77* DB 165.78±17.53 6.63 241.44±60.97 4.83 171±46 13.68 2.58±0.82 FS 129.63±22.55 5.19 228.61±68.19 4.57 119±20 9.52 2.00±0.49 注：* 表示与SG组差异显著（P<0.05, n=3）， mg/100 g。 3. 结论
6组加州鲈鱼肌肉中检测出16种游离氨基酸，MB组鲜味氨基酸总量、Asp含量和EUC显著高于SG组（P<0.05），6组的鲜味氨基酸总量、苦味氨基酸总量和EUC的大小顺序均与电子舌预测的顺序基本一致。因此饲喂干酪乳杆菌K17不同剂型对加州鲈鱼滋味成分和含量的影响存在明显差异， MB组饲料对加州鲈鱼肌肉整体滋味贡献最大，这可为干酪乳杆菌K17在加州鲈鱼养殖中应用提供参考。另外，本文虽对饲喂干酪乳杆菌K17不同剂型对加州鲈鱼滋味成分和含量进行了测定和分析，但是导致这些差异的具体原因需要进一步的实验验证。
-
![]()
图 1 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉电子舌PCA分析图
Figure 1. PCA analysis of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds
![]()
图 2 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉电子舌DFA分析图
Figure 2. DFA analysis of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds
![]()
图 3 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料的加州鲈鱼肌肉滋味雷达图
Figure 3. Taste radar map of electronic tongue of muscle of M. salmoides fed with 6 groups of different Lactobacillus casei K17 feeds
![]()
图 4 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸总量和必需氨基酸总量的影响
注：a表示与SG组差异显著（P<0.05，n=3）；EAA：必需氨基酸；AA：氨基酸；FAA：游离氨基酸。
Figure 4. Effects on essential amino acid and free amino acids and in muscle of M. salmoides in the six groups
表 1 本研究中饲喂加州鲈鱼的六种试验饲料
Table 1 Six experimental diets for feeding M.salmoides in this study
处理组 试验饲料（每300 g基础饲料） SG 30 mL氯化钠溶液（0.85%） MG 30 mL脱脂奶粉溶液（10%） LB 30 mL活干酪乳杆菌K17（在0.85%氯化钠溶液中为108 CFU/mL） MB 30 mL活干酪乳杆菌K17（在10%脱脂奶粉溶液中为108 CFU/mL） DB 30 mL热杀死的干酪乳杆菌K17（108 CFU/mL） FS 干酪乳杆菌K17的30 mL发酵上清液 
下载: 导出CSV
表 2 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸的影响
Table 2 Effects of six different groups of Lactobacillus casei K17 feeds on free amino acids in muscle of M. salmoides
味道特征 AA SG MG LB MB DB FS 鲜味 Asp 0.077±0.004 0.091±0.018 0.108±0.029 0.176±0.026a 0.154±0.012 a 0.116±0.021 Glu 0.210±0.008 0.229±0.008 0.240±0.013 0.282±0.052 0.268±0.024 0.247±0.028 UMS 0.287±0.012 0.320±0.012 0.347±0.041 0.460±0.070a 0.423±0.038 0.360±0.044 甜味 Thr* 0.645±0.018 1.252±0.268 0.981±0.232 0.803±0.221 0.972±0.190 0.855±0.034 Ser 0.231±0.025 0.369±0.017 0.290±0.067 0.262±0.109 0.282±0.070 0.296±0.014 Pro 0.957±0.130 1.050±0.149 1.697±0.559 1.333±0.250 1.247±0.108 1.873±0.564 Gly 4.565±0.204 5.106±0.262 5.752±0.425 4.577±0.568 4.988±1.175 5.283±0.258 Ala ND ND ND ND ND ND SWS 6.400±0.221 7.777±0.262 8.720±0.036 6.973±1.092 7.487±1.146 8.310±0.428 苦味 Val* 0.096±0.007 0.170±0.020 0.142±0.036 0.159±0.053 0.128±0.020 0.202±0.027a Met* 0.042±0.002 0.063±0.005 0.043±0.010 0.062±0.018 0.047±0.011 0.062±0.003 Ile* 0.069±0.005 0.108±0.006 0.091±0.018 0.106±0.045 0.087±0.006 0.156±0.025a Leu* 0.135±0.004 0.231±0.016 0.200±0.044 0.206±0.075 0.181±0.021 0.274±0.013a Tyr 0.074±0.005 0.074±0.006 0.079±0.017 0.083±0.015 0.071±0.003 0.098±0.024 Phe* 0.192±0.038 0.284±0.007a 0.249±0.011 0.222±0.021 0.196±0.035 0.325±0.030a Lys* 0.179±0.020 0.227±0.015 0.178±0.056 0.212±0.098 0.178±0.021 0.286±0.064 His 1.229±0141 1.860±0.031 1.267±0.144 1.533±0.302 1.404±0.280 1.720±0.110 Arg 0.036±0.003 0.053±0.006 0.042±0.014 0.035±0.012 0.041±0.010 0.053±0.003 BRS 2.052±0.153 3.069±0.045 2.293±0.243 2.617±0.612 2.334±0.372 3.176±0.048a 无味 Cys 0.049±0.001 0.048±0.007 0.046±0.005 0.045±0.009 0.041±0.002 0.051±0.002 FAA 8.790±0.122 11.879±0.378 11.405±0.265 10.097±1.734 10.287±1.514 11.895±0.468 注：ND表示未检出；*：必需氨基酸（EAA）， mg/100 g；a表示与SG组差异显著（P<0.05, n=9）；UMS、SWS、BRS和FAA分别表示鲜味氨基酸、甜味氨基酸、苦味氨基酸和游离氨基酸。
下载: 导出CSV
表 3 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉游离氨基酸TAV的影响
Table 3 Effects on TAV of free amino acids in muscle of M. salmoides in the six groups
氨基酸 滋味贡献 阈值（mg/mL） SG MG LB MB DB FS Asp 鲜/酸（+） 1 0.08 0.09 0.11 0.18 0.15 0.12 Glu 鲜/酸（+） 0.3 0.70 0.76 0.80 0.94 0.89 0.82 Thr 甜（+） 2.6 0.25 0.48 0.38 0.31 0.37 0.33 Ser 甜（+） 1.5 0.15 0.25 0.19 0.17 0.19 0.20 Gly 甜（+） 1.3 3.51 3.93 4.42 3.52 3.84 4.06 Ala 甜（+） 0.6 ND ND ND ND ND ND Val 甜/苦（−） 0.4 0.24 0.43 0.36 0.40 0.32 0.51 Lys 甜/苦（−） 0.5 0.36 0.45 0.36 0.42 0.36 0.57 Pro 甜/苦（+） 3 0.32 0.35 0.57 0.44 0.42 0.62 Met 苦/甜/硫（−） 0.3 0.04 0.06 0.04 0.06 0.05 0.06 Ile 苦（−） 0.9 0.08 0.12 0.10 0.12 0.10 0.17 Leu 苦（−） 1.9 0.07 0.12 0.11 0.11 0.10 0.14 Phe 苦（−） 0.9 0.21 0.32 0.28 0.25 0.22 0.36 His 苦/鲜（−） 0.2 6.15 9.30 6.34 7.67 7.02 8.60 Arg 苦/甜（+） 0.5 0.07 0.11 0.08 0.07 0.08 0.11 注：ND：表示未检出，mg/100 g，n=9。
下载: 导出CSV
表 4 饲喂6组不同干酪乳杆菌K17饲料对加州鲈鱼肌肉呈味核苷酸、TAV和EUC值的影响
Table 4 Effects on taste nucleotides, TAV and EUC in muscle of M. salmoides in the six groups
样品 IMP AMP GMP EUC （%） 含量
（mg/100 g）TAV 含量
（mg/100 g）TAV 含量
（mg/100 g）TAV SG 127.12±6.07 5.08 137.01±19.22 2.7 119±7 9.52 1.13±0.13 MG 143.16±13.10 5.72 154.16±10.53 3.08 133±33 10.64 1.64±0.23 LB 142.29±11.35 5.68 148.05±9.33 2.96 145±8 11.6 1.80±0.20 MB 193.50±21.76* 7.74 196.61±30.45 3.93 208±14* 16.64 2.93±0.77* DB 165.78±17.53 6.63 241.44±60.97 4.83 171±46 13.68 2.58±0.82 FS 129.63±22.55 5.19 228.61±68.19 4.57 119±20 9.52 2.00±0.49 注：* 表示与SG组差异显著（P<0.05, n=3）， mg/100 g。
下载: 导出CSV
-
[1] CHEN Y J, LIU Y J, TIAN L X, et al. Effect of dietary vitamin E and selenium supplementation on growth, body composition, and antioxidant defense mechanism in juvenile largemouth bass (Micropterus salmoides) fed oxidized fish oil[J]. Fish Physiology and Biochemistry,2013,39(3):593−604. doi: 10.1007/s10695-012-9722-1
[2] YU D, XU Y, REGENSTEIN J M, et al. The effects of edible chitosan-based coatings on flavor quality of raw grass carp (Ctenopharyngodon idellus) fillets during refrigerated storage[J]. Food Chemistry,2018,242:412−420. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.09.037
[3] 李志琼, 杜宗君, 范林君. 饲料营养对水产品肉质风味的影响[J]. 水产科学,2002,21(2):38−41. [LI Z Q, DU Z J, FAN L J. Effect of feed nutrition on the meat flavor of aquatic products[J]. Journal of Fishery Sciences,2002,21(2):38−41. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2002.02.013 LI Z Q, DU Z J, FAN L J. Effect of feed nutrition on the meat flavor of aquatic products[J]. Journal of Fishery Sciences, 2002, 21(2): 38-41. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2002.02.013
[4] 李百安. 大黄鱼(Pseudosciaena crocea)、罗非鱼(Oreochramis miloticas×O. aureus)的肌肉品质研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2015 LI B A. Study on muscle quality of Pseudosciaena crocea and Oreochramis miloticas×O. aureus[D]. Shanghai: Shanghai Ocean University, 2015.
[5] 夏雨, 易华西, 范荣波, 等. 饲喂乳酸菌对凡纳滨对虾幼虾肉质的影响[J]. 中国水产科学,2020,27(1):74−82. [XIA Y, YI H X, FAN R B, et al. Effects of dietary lactic acid bacteria on the meat quality of juvenile Litopenaeus vannamei[J]. Journal of Fishery Sciences of China,2020,27(1):74−82. XIA Y, YI H X, FAN R B, et al. Effects of dietary lactic acid bacteria on the meat quality of juvenile Litopenaeus vannamei[J]. Journal of Fishery Sciences of China, 2020, 27(1): 74-82.
[6] 关文静, 朱艺峰, 陈芝丹. 鱼类肌纤维特性与鱼肉品质关系[J]. 水产科学,2008(2):101−104. [GUAN W J, ZHU Y F, CHEN Z D. Relationship between fish muscle fiber characteristics and fish quality[J]. Journal of Fishery Sciences,2008(2):101−104. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2008.02.014 GUAN W J, ZHU Y F, CHEN Z D. Relationship between fish muscle fiber characteristics and fish quality[J]. Journal of Fishery Sciences, 2008(2): 101-104. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2008.02.014
[7] MOHAN C O, RAVISHANKAR C N, GOPAL T K S, et al. Nucleotide breakdown products of seer fish (Scomberomorus commerson) steaks stored in O2 scavenger packs during chilled storage[J]. Innovative Food Science & Emerging Technologies,2009,10(2):272−278.
[8] WATANABE G, KOBAYASHI H, SHIBATA M, et al. Reduction of dietary lysine increases free glutamate content in chicken meat and improves its taste[J]. Animal Science Journal,2016,88(2):300−305.
[9] DAWOOD M A, KOSHIO S, ISHIKAWA M, et al. Effects of dietary supplementation of Lactobacillus rhamnosus or/and Lactococcus lactis on the growth, gut microbiota and immune responses of red sea bream, Pagrus major[J]. Fish Shellfish Immunology,2016,49:275−285. doi: 10.1016/j.fsi.2015.12.047
[10] GAO X, ZHANG M, LI X, et al. The effects of feeding Lactobacillus pentosus on growth, immunity, and disease resistance in Haliotis discus hannai Ino
[J]. Fish Shellfish Immunology,2018,78:42−51. doi: 10.1016/j.fsi.2018.04.010 [11] SOLTANI M, PAKZAD K, TAHERI-MIRGHAED A, et al. Dietary application of the probiotic Lactobacillus plantarum 426951 enhances immune status and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) vaccinated against Yersinia ruckeri[J]. Probiotics Antimicrob Proteins,2019,11(1):207−219. doi: 10.1007/s12602-017-9376-5
[12] HASAN M T, JANG W J, LEE B J, et al. Heat-killed Bacillus sp. SJ-10 probiotic acts as a growth and humoral innate immunity response enhancer in olive flounder (Paralichthys olivaceus)[J]. Fish Shellfish Immunology,2019,88:424−431. doi: 10.1016/j.fsi.2019.03.018
[13] SUO C, YIN Y, WANG X, et al. Effects of lactobacillus plantarum ZJ316 on pig growth and pork quality[J]. Bmc Veterinary Research,2012,8:89. doi: 10.1186/1746-6148-8-89
[14] LIAO X, WU R, MA G, et al. Effects of Clostridium butyricum on antioxidant properties, meat quality and fatty acid composition of broiler birds[J]. Lipids in Health & Disease,2015,14(1):36.
[15] YANG G, CAO H, JIANG W, et al. Dietary supplementation of Bacillus cereus as probiotics in Pengze crucian carp (Carassius auratus var. Pengze): Effects on growth performance, fillet quality, serum biochemical parameters and intestinal histology[J]. Aquaculture Research,2019,50(8):2207−2217. doi: 10.1111/are.14102
[16] WEI Z, MA J, PAN X, et al. Dietary hydroxyproline improves the growth and muscle quality of large yellow croaker Larimichthys crocea[J]. Aquaculture,2016,464:497−504. doi: 10.1016/j.aquaculture.2016.07.015
[17] KALAVATHY R, ABDULLAH N, JALALUDIN S, et al. Effects of Lactobacillus feed supplementation on cholesterol, fat content and fatty acid composition of the liver, muscle and carcass of broiler chickens[J]. Animal Research,2006,55(1):77−82. doi: 10.1051/animres:2005043
[18] JUNG S, CHOE J H, KIM B, et al. Effect of dietary mixture of gallic acid and linoleic acid on antioxidative potential and quality of breast meat from broilers[J]. Meat Science,2010,86(2):520−526. doi: 10.1016/j.meatsci.2010.06.007
[19] XU S, LIU T, RADJI C A, et al. Isolation, identification, and evaluation of new lactic acid bacteria strains with both cellular antioxidant and bile salt hydrolase activities in vitro[J]. Journal of food protection,2016,79(11):1919−1928. doi: 10.4315/0362-028X.JFP-16-096
[20] WANG J S, ZHU Z Y, LI R, et al. Impact of supplementary Lactobacillus casei K17 on growth and gut health of largemouth bass Micropterus salmoides[J]. Aquaculture Reports,2021,20:100734. doi: 10.1016/j.aqrep.2021.100734
[21] WANG J S, ZHU Z Y, TIAN S H, et al. Dietary Lactobacillus casei K17 improves lipid metabolism, antioxidant response, and fillet quality of Micropterus salmoides[J]. Animals,2021,11:2564. doi: 10.3390/ani11092564
[22] ZHENG X T, DUAN Y F, DONG H B, et al. Effects of dietary Lactobacillus plantarum on growth performance, digestive enzymes and gut morphology of Litopenaeus vannamei[J]. Probiotics Antimicrob Proteins,2018,10(3):504−510. doi: 10.1007/s12602-017-9300-z
[23] BRUGGER S D, BAUMBERGER C, JOST M, et al. Automated counting of bacterial colony forming units on agar plates[J]. PLoS One,2012,7(3):e33695. doi: 10.1371/journal.pone.0033695
[24] ABADIAS M, BENABARRE A, TEIXIDó N, et al. Effect of freeze drying and protectants on viability of the biocontrol yeast Candida sake[J]. International Journal of Food Microbiology,2001,65(3):173−182. doi: 10.1016/S0168-1605(00)00513-4
[25] 周纷, 张艳霞, 张龙, 等. 冰鲜大黄鱼不同副产物中滋味成分差异分析[J]. 食品科学,2019,40(16):193−199. [ZHOU F, ZHANG Y X, ZHANG L, et al. Differences in taste components in by-products of chilled large yellow croaker (Pseudosciaena crocea)[J]. Food Sciences,2019,40(16):193−199. doi: 10.7506/spkx1002-6630-20181008-034 ZHOU F, ZHANG Y X, ZHANG L, et al. Differences in taste components in by-products of chilled large yellow croaker (Pseudosciaena crocea)[J]. Food Sciences, 2019, 40(16): 193-199. doi: 10.7506/spkx1002-6630-20181008-034
[26] 付娜, 王锡昌, 陶宁萍, 等. 蒸制和煮制中华绒螯蟹4个部位中游离氨基酸含量差异性分析[J]. 食品科学,2013,34(24):178−181. [FU N, WANG X C, TAO N P, et al. Comparative analysis of free amino acids in four parts of Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis) processed by steaming and boiling[J]. Food sciences,2013,34(24):178−181. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201324037 FU N, WANG X C, TAO N P, et al. Comparative analysis of free amino acids in four parts of Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis) processed by steaming and boiling[J]. Food sciences, 2013, 34(24): 178-181. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201324037
[27] CHEN D W, ZHANG M, SHRESTHA S. Compositional characteristics and nutritional quality of Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis)[J]. Food Chemistry,2007,103(4):1343−1349. doi: 10.1016/j.foodchem.2006.10.047
[28] TAN X, SUN Z, LIU Q, et al. Effects of dietary ginkgo biloba leaf extract on growth performance, plasma biochemical parameters, fish composition, immune responses, liver histology, and immune and apoptosis-related genes expression of hybrid grouper (Epinephelus lanceolatus♂ × Epinephelus fuscoguttatus♀) fed high lipid diets[J]. Fish & Shellfish Immunology,2018,72:399−409.
[29] KONG Y, ZHANG L L, SUN Y, et al. Determination of the free amino acid, organic Acid, and nucleotide in commercial vinegars[J]. Journal of Food Science,2017,82(5):1116−1123. doi: 10.1111/1750-3841.13696
[30] JIANG W D, WU P, TANG R J, et al. Nutritive values, flavor amino acids, healthcare fatty acids and flesh quality improved by manganese referring to up-regulating the antioxidant capacity and signaling molecules TOR and Nrf2 in the muscle of fish[J]. Food Research International,2016,89(1):670−678.
[31] 何炘, 杨荣华. 鲜味物质及其在水产调味品中的应用[J]. 中国调味品,2005(4):3−8,37. [HE X, YANG R H. Umami substances and their application in aquatic condiments[J]. Journal of Chinese condiments,2005(4):3−8,37. doi: 10.3969/j.issn.1000-9973.2005.04.001 HE X, YANG R H. Umami substances and their application in aquatic condiments[J]. Journal of Chinese condiments, 2005 (4): 3-8, 37. doi: 10.3969/j.issn.1000-9973.2005.04.001
[32] YANG X, SONG J, ZHAO Y, et al. Analysis and evaluation of flavor components in meat of sea cage-cultured Trachinotus ovatus[J]. Food Science,2016,8:138−142.
[33] WU H C, SHIAU C Y. Proximate composition, Free amino acids and peptides contents in commercial chicken and other meat essences[J]. Journal of Food & Drug Analysis,2002,10(3):170−177.
[34] FUKE S, KONOSU S. Taste-active components in some foods: A review of Japanese research[J]. Physiology & Behavior,1991,49(5):863−868.
[35] ZHANG N, AYED C, WANG W, et al. Sensory-guided analysis of key taste-active compounds in pufferfish (Takifugu obscurus)[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2019,67(50):13809−13816. doi: 10.1021/acs.jafc.8b06047
[36] CHEN G, LI J, SUN Z, et al. Rapid and sensitive ultrasonic-assisted derivatization microextraction (UDME) technique for bitter taste-free amino acids (FAA) study by HPLC-FLD[J]. Food Chemistry,2014,143:97−105. doi: 10.1016/j.foodchem.2013.07.099
[37] 王四新, 季海峰, 王红卫, 等. 干酪乳杆菌对北京黑猪育肥阶段生长性能和肌肉营养成分含量的影响[J]. 动物营养学报,2019,31(1):480−487. [WANG S X, JI H F, WANG H W, et al. Effects of Lactobacillus casei on growth performance and muscle nutritional component contents of Beijing black pigs during fattening stage[J]. Journal of Animal Nutritions,2019,31(1):480−487. WANG S X, JI H F, WANG H W, et al. Effects of Lactobacillus casei on growth performance and muscle nutritional component contents of Beijing black pigs during fattening stage[J]. Journal of Animal Nutritions, 2019, 31(1): 480-487.
[38] FUKE S, UEDA Y. Interactions between umami and other flavor characteristics[J]. Trends in Food Science & Technology,1996,7(12):407−411.
[39] CHEN D W, ZHANG M. Non-volatile taste active compounds in the meat of Chinese mitten crab (Eriocheir sinensis)[J]. Food Chemistry,2007,104(3):1200−1205. doi: 10.1016/j.foodchem.2007.01.042
-
期刊类型引用(3)
1. 张敏杰，杨武德，代叶，李玮，魏晴，梁珊珊. 黔产不同商品规格金钗石斛质量评价研究. 亚太传统医药. 2024(04): 39-43 . 
百度学术
2. 林鑫静，张明，李鑫，周春阳，蒲跃，袁斌，范艺缤，范润勇，夏天琴，尤俊，杨晓曦，胥正敏. 调脏舒秘合剂小鼠急性毒性实验研究. 现代中医药. 2023(02): 91-95 . 百度学术
3. 杨吉容，石京山. 金钗石斛破壁粉对自发性高血压大鼠血压及心功能的影响. 遵义医科大学学报. 2022(06): 699-705 . 百度学术
其他类型引用(2)
下载:
计量
- 文章访问数:
- HTML全文浏览量:
- PDF下载量:
- 被引次数: 5
