Effect of Dry Degumming on the Stability and Nutritional Properties of Flaxseed Plant Milk
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摘要: 为探究亚麻籽胶对亚麻籽植物乳的稳定性、营养特性的影响，本研究对亚麻籽进行干法脱胶，并全面探究了不同脱胶率对亚麻籽植物乳营养素溶出和稳定性的影响，对不同样品的粒径、zeta电位、粘度、Turbiscan稳定性指数、流变性能、微观结构、总固形物含量、总酚含量和蛋白含量进行了测定和分析。结果表明，与未脱胶的亚麻籽所制亚麻籽乳相比，脱胶后亚麻籽乳的电位绝对值增大且粒径、稳定性指数和粘度均变小，其中脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳电位绝对值由26.72 mV增大至29.60 mV，D[4,3]由34.90 μm减小至22.60 μm，粘度降低了9.95%，且表现出剪切稀化行为，液滴分布均匀。脱胶率为6.30%的亚麻籽植物乳的总固形物含量提高了5.03%，达到7.73 g/100 mL，蛋白含量提高了18.78%，达到2.15 g/100 mL，表明亚麻籽经适度脱胶后能够提高亚麻籽植物乳的稳定性，促进蛋白质等营养素溶出，相关研究结果为亚麻籽高值化、全值化加工利用提供参考依据。Abstract: To explore the effect of flaxseed gum on the stability and nutritional characteristics of flaxseed milk. The degummed flaxseeds were obtained by dry method, and the effects of different degumming rates on the nutrient release and the stability of flaxseed milk were comprehensively investigated. The particle size, zeta potential, viscosity, turbiscan stability index, rheological properties, microstructure, total solids content, total phenol content and protein content of different samples were measured and analyzed. The results showed that the absolute potential value of flaxseed milk increased and the particle size, stability index and viscosity decreased after degumming. With a degumming rate of 4.0%, the absolute potential value of flaxseed milk increased from 26.72 mV to 29.60 mV, the D[4,3] decreased from 34.90 μm to 22.60 μm, and the viscosity was reduced by 9.95%, it showed a shear thinning behavior, and the droplet distribution was uniform. With a degumming rate of 6.30%, the total solids content and the protein content of flaxseed milk reached 7.73 g/100 mL and 2.15 g/100 mL, with an increase of 5.03% and 18.78%, respectively. These results indicated that moderate degumming facilitate the stability and the protein release of flaxseed milk. The research provides a reference for high-value processing and utilization of flaxseed.
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Keywords:
- dry degumming /
- flaxseed gum /
- flaxseed plant milk /
- stability /
- nutritional properties
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亚麻籽是最重要的油料作物之一[1]，其种皮中富含独特的天然植物胶-亚麻籽胶（flaxseed gum，FG），约占种子干重的8%[2]。FG作为一种功能性食品成分可用于降低糖尿病和心脏病的风险[3]，与大多数多糖一样，作为天然的乳化剂和稳定剂，FG在稳定水包油乳液方面发挥着重要作用，并具有良好的保水和增稠能力。亚麻籽植物乳中富含丰富的亚麻籽胶等膳食纤维，因此，可以在不额外添加乳化剂或稳定剂等外源性添加剂的基础上，实现亚麻籽乳的自稳定效果。然而，当亚麻籽胶含量较多时，亚麻籽植物乳中的亚麻籽胶与乳液其他相发生“排除絮凝”[4]，同时体系流动性下降，出现固体性质。或因为亚麻籽胶等多糖大分子含量较少引起“桥接絮凝”[5]，无法实现亚麻籽植物乳自稳定体系的构建[6]。通过对亚麻籽脱胶程度的控制，可以更好地维持亚麻籽植物乳的自稳定状态。
亚麻籽脱胶是指将亚麻籽种皮中存在的高黏度亚麻籽胶脱除，目前常用的脱胶方式分为湿法脱胶与干法脱胶。湿法脱胶是直接利用水或电解质溶液浸泡、淋洗进行脱胶，有研究使用水浸出法对亚麻籽进行脱胶，发现经过浸泡过程，部分亚麻籽胶溶出，但亚麻籽表面仍残留着较多的多糖胶层[7]，且脱除的亚麻籽胶回收利用需要经过醇沉及浓缩干燥，对环境污染大，且浸泡过程会浪费大量水资源，不易于大规模推广[8]。干法脱胶则是利用特定的设备，如球磨机、粉碎机等进行打磨脱胶，整个制备过程操作简单，经过干法脱胶处理可将部分亚麻籽胶脱除，不仅可以保持亚麻籽的良好品质，促进亚麻籽资源高效利用，同时分离效率高，残留胶质物很少[9]。脱胶程度的控制即亚麻籽中内源高黏度亚麻籽胶的残留率，对于湿磨的亚麻籽植物乳中营养成分的溶出、O/W体系的稳定性具有重要影响，然而目前干法脱胶技术在亚麻籽植物乳中的应用仍未见相关报道。
因此，本研究首先通过砂辊打磨亚麻籽实现其脱胶程度控制，并进一步深入探究脱胶对亚麻籽植物乳稳定性及营养特性（如蛋白质等营养素溶出）的影响。通过对不同脱胶率的亚麻籽植物乳理化性质和营养成分分析，相关研究结果为开发一种无需添加外源性添加剂、营养丰富、稳定性好的亚麻籽植物乳提供理论参考。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
亚麻籽 甘肃金昌；硫酸、硼酸、甲基红、溴甲酚绿、海砂、甲醇、无水碳酸钠 国药集团化学试剂有限公司；福林酚 美国Sigma-Aldrich公司；所用试剂均为分析纯。
TJFL-18S干磨脱胶系统 武汉中油康尼科技有限公司；CEM MARSX密闭式微波快速萃取系统 美国CEM公司；马尔文3000激光粒度分析仪、马尔文纳米粒径分析仪 英国马尔文仪器公司；Turbiscan MA2000多重光散射仪 FORMU-LAC TION公司；LSM980超分辨共聚焦显微镜 卡尔蔡司集团；AR2000 rheometer动态剪切流变仪 美国TA仪器公司；SNB-1数显粘度计 上海衡平仪器仪表有限公司；101-1AB电热鼓风干燥箱 天津市泰斯特仪器有限公司；HH-6数显恒温水浴锅 金坛市鸿科仪器厂；CR-410色度仪 日本柯尼卡美能达公司。
1.2 实验方法
1.2.1 亚麻籽水分含量的测定
参照GB 5009.3-2016《食品安全国家标准 食品中水分的测定》，采用直接干燥法测定水分含量。
1.2.2 亚麻籽打磨脱胶
参考黄庆德等[9]的方法，取一定质量亚麻籽经干磨脱胶系统循环打磨脱胶，分别收集得到脱胶亚麻籽和胶粉，控制循环脱胶次数为0、7、11、13、15次，将全部脱胶亚麻籽取出称重，脱胶率计算如下：
脱胶率(%)=(初始亚麻籽质量−脱胶亚麻籽质量)/初始亚麻籽质量×100 1.2.3 亚麻籽植物乳的制备
参考全双等[10]的方法并稍作修改，选择未脱胶和脱胶亚麻籽，经调水至亚麻籽水分含量为19%后进行微波处理，720 W功率下微波10 min，亚麻籽与去离子水以1:7浸泡2 h，用榨汁机提浆3 min，用200目滤布过滤，装瓶，待用。
1.2.4 乳液色度的测定
参考郝梦等[11]的方法，用色度仪测定亚麻籽植物乳的L*值（明亮度），a*值（红绿偏差），b*值（黄蓝偏差）来评价不同脱胶程度对亚麻籽植物乳的色差变化。
1.2.5 亚麻籽植物乳粘度测定
参考Choo等[12]的方法并稍作修改测定乳液的粘度。使用3号心轴在室温下以60 r/min的转速剪切30 s后读取新制备的乳液的扭矩。取30 mL亚麻籽植物乳于50 mL平底离心管中，并且在每次测量过程中保持心轴深度恒定。
1.2.6 亚麻籽植物乳zeta电位测定
参考Cheng等[13]的方法并稍作修改。亚麻籽植物乳的zeta电位值通过马尔文纳米粒径分析仪和DTS-1070毛细管比色杯在25 ℃下测量，在测量之前，将所有样品分散在去离子水中稀释250倍。zeta电位提供了在剪切平面上测量的液滴上的净电荷的估计。该zeta电位与液滴、乳化剂和生物聚合物的电荷以及与在电场中随液滴移动的任何离子相关的电荷直接相关。
1.2.7 亚麻籽植物乳粒径测定
参考Kartal等[14]的方法，乳液的粒径用静态光散射（Static Light Scattering, SLS）技术测量，SLS技术利用分子散射的光强度与其分子量和大小之间的关系来测量绝对分子量。体积平均直径用D[4,3]表示。油相和连续相的折射率分别取1.478和1.33，搅拌速率设定为2000 r/min，测试温度为25 ℃，每个样品测定三次。
1.2.8 短期稳定性分析
参考Raikos等[15]的方法，使用激光衍射扫描进行多次光散射测量，以监测乳液的物理稳定性。该仪器可以比肉眼更早、更快地检测到乳液的失稳行为。扫描数据是通过近红外光源（880 nm）和两个同步探测器的透射和反向散射获得的，这两个探测器位于探测头中。乳液平均尺寸的变化（聚结/絮凝）或液滴在每个位置的迁移由ΔBS反映。此外，使用Turbiscan稳定性指数（Turbiscan Stability Index，TSI）来评估乳液的整体稳定性[16]。
1.2.9 流变特性分析
参照Chen等[17]的方法并稍作修改，稳态剪切试验温度保持在25±0.1 ℃，剪切速率在0.01~100 s −1范围内测量表观粘度。该剪切速率范围涵盖了许多食品操作中非牛顿流体食品的流动。
1.2.10 激光共聚焦扫描显微镜
参考Cheng等[13]的方法，使用共聚焦激光扫描显微镜在25 ℃的荧光模式下观察新鲜乳液的形态。将200 μL的乳剂与5 mmol/L的缓冲液（V/V，1:1）混合。尼罗红乙醇溶液（1 mg/mL）用于油染色。将20 μL的染色液加入到200 μL的乳液中。激发波长为543 nm，发射波长为605 nm。
1.2.11 亚麻籽植物乳总固形物含量
参考GB/T12143-2008《饮料通用分析方法》方法，取10 mL样品于已知称量恒重含海砂的称量皿中，在100 ℃水浴上放置至水分蒸发，取下称量皿，擦干附着的水分，再放入恒温干燥箱中，在105 ℃下烘至恒重。
1.2.12 亚麻籽植物乳的总酚含量
参考Vázquez等[18]的方法并稍作修改，采用Folin–Ciocalteu比色法进行测定。准确称取1.5 g亚麻籽植物乳于10 mL离心管中，加入4 mL 50%甲醇，振荡涡旋20 min后，5000 r/min离心10 min。吸取1 mL上清液于10 mL容量瓶中，以1 mL甲醇作为空白对照，加入5 mL双蒸水和0.5 mL福林酚，摇匀，反应3 min后加入1 mL饱和碳酸钠溶液，用双蒸水定容至10 mL，摇匀，避光静置1 h，于765 nm处测定其吸光值，平行测量三次。
1.2.13 亚麻籽植物乳的蛋白质含量
蛋白质含量依照GB 5009.5-2016《食品安全国家标准 食品中蛋白质的测定》第一法测定，氮转换系数为6.25。
1.3 数据处理
所有实验均测定3次。使用SPSS Statistics 26软件进行单因素方差分析（ANOVA），衡量组间差异，P<0.05表示差异显著。图表由Origin 2021软件绘制。
2. 结果与分析
2.1 不同脱胶次数亚麻籽的脱胶率
从表1可知，利用高速辊磨对亚麻籽进行打磨处理，由于亚麻籽胶主要存在于亚麻籽种皮中，随着打磨脱胶循环次数的提高，亚麻籽种皮中的亚麻籽胶由于摩擦逐层脱落，亚麻籽干法脱胶率随着脱胶次数的增大而依次增大，所得亚麻籽中含胶率依次下降。
表 1 脱胶次数对亚麻籽脱胶率的影响Table 1. Effects of degumming times on the degumming rate of flaxseed脱胶次数（次） 未脱胶 7 11 13 15 干法脱胶率（%） 0 2.7±0.02 4.0±0.01 6.3±0.05 7.6±0.02 2.2 不同脱胶率对亚麻籽植物乳色度的影响
色度值与亚麻籽植物乳的品质有着密切的相关性，L*值是反映亚麻籽植物乳品质的重要指标。表2中的L*、a*和b*值分别表示不同脱胶率亚麻籽植物乳的明暗度、红绿色度和黄蓝色度[19]。由表中可知亚麻籽植物乳L*、a*值均为正值，b*值均为负值，说明亚麻籽乳色泽较明亮，与未脱胶的亚麻籽植物乳相比，脱胶后的亚麻籽乳L*值均呈上升趋势，而a*、b*均下降，说明亚麻籽植物乳色泽更明亮，而颜色变浅，可能与脱胶使得存在于亚麻籽种皮中的色素被打磨脱除有关[20]。
表 2 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳色度的影响Table 2. Effects of different degrees of degumming on the color of flaxseed plant milk样品 L* a* b* 未脱胶 94.08±0.10c 4.76±0.01a −1.45±0.04a 2.70% 98.94±0.42b 3.38±0.10b −4.78±0.22d 4.00% 99.50±0.10a 3.33±0.10b −4.51±0.06c 6.30% 99.53±0.10a 3.31±0.02b −3.68±0.02b 7.60% 99.31±0.07ab 3.17±0.04c −4.52±0.10c 注：同列不同字母表示差异显著（P<0.05）。 2.3 干法脱胶对亚麻籽植物乳粘度的影响
乳液是一种胶体分散体系，乳液的粘度关系到乳液的流动性，其粘度主要与分散介质的粘度有关。乳液粘度是一个重要的质量指标，它对乳液生产过程中的传质、传热、流体流动、乳液稳定性的影响都很大[21]。由图1可知，随着脱胶率的增加，亚麻籽植物乳的粘度依次降低，当脱胶率为7.6%时，粘度显著降低（P<0.05），降低率为27.58%。这是因为亚麻籽胶主要存在于亚麻籽外壳，经过打磨处理后，其胶质物减少，以致乳液粘度降低。
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图 1 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳粘度的影响注：不同字母表示组间差异显著（P<0.05）。Figure 1. Effects of different degrees of degumming on the viscosity of flaxseed plant milk2.4 干法脱胶对亚麻籽植物乳电位的影响
zeta电位与亚麻籽植物乳稳定性有着较直接的关系，分子或分散粒子越小，zeta电位的绝对值越高，说明亚麻籽植物乳中分散微粒之间的斥力越大，体系越稳定，反之，zeta电位越低，油滴越倾向于凝结或凝聚[22]。由图2可知，脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳的电位绝对值较未脱胶的亚麻籽植物乳大，电位值分别为-29.60 mV和-26.72 mV。上述现象可能是因为乳液液滴之间较高的zeta电位值绝对值可使液滴之间产生强烈的静电排斥作用，从而可以防止乳液液滴聚集，进而提高乳液稳定性[23]。
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图 2 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳zeta电位的影响注：不同小写字母表示组间差异显著（P<0.05）；图3同。Figure 2. Effects of different degrees of degumming on zeta potential of flaxseed plant milk2.5 干法脱胶对亚麻籽植物乳粒径大小及分布的影响
乳液的粒径是反映稳定性和影响物理化学性质的重要指标。通常，乳液颗粒尺寸越小，乳液就越稳定[24]。亚麻籽植物乳的粒径大小和粒径分布如图3所示，亚麻籽植物乳的粒径分布呈典型的三峰型，且随着脱胶率越大，粒径分布曲线逐渐向粒径更小的方向偏移，未脱胶的亚麻籽植物乳粒径最大，其D[4,3]为34.90 μm，脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳粒径最小，其D[4,3]为22.60 μm，同时从图2的电位结果可以看出脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳的电位绝对值较未脱胶的高，说明脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳较稳定。亚麻籽胶作为天然稳定剂可以迁移到油水界面，吸附在乳液液滴的表面，阻止液滴间的絮凝和聚结[25]。然而，未脱胶的亚麻籽植物乳形成的凝胶网络结构较致密，从而增大了油滴碰撞形成较大油滴的几率；脱胶率为6.3%和7.6%的亚麻籽植物乳中的多糖大分子易引起“桥接絮凝”[26]，通常多糖被吸附到蛋白质表面，如果多糖的数量没有完全覆盖蛋白质，会导致两个或更多的蛋白质颗粒之间形成架桥，因此无法实现自稳定体系的构建，及“桥接絮凝”，Zhao等[27]在酪蛋白酸钠-亚麻籽胶体系中发现在乳化过程中，由于酪蛋白酸盐-亚麻籽胶复合物不足以覆盖油滴表面，导致油滴发生“桥接絮凝”。
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图 3 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳D[4,3]（A）和粒径分布（B）的影响Figure 3. Effects of different degrees of degumming on flaxseed plant milk D[4,3] (A) and particle size distribution (B)2.6 干法脱胶对亚麻籽植物乳短期稳定性的影响
TSI是反映乳液整体稳定性的另一个重要指标，可用于研究颗粒的分散性和均匀性。通常，TSI值越小，乳液的稳定性越好[24]。图4显示了不同脱胶率的亚麻籽植物乳的TSI值的变化，脱胶率对乳液的稳定性具有一定的影响。脱胶率为4.0%时乳液稳定性提高，该现象可能是由于亚麻籽胶形成的网络结构对分散油滴的包裹。脱胶率为7.6%的乳液稳定性差可能是由于油滴与蛋白质的低覆盖率导致的，较少的多糖链可能引起蛋白、油脂体等“串联”，从而导致聚结絮凝现象[28]。而未脱胶的亚麻籽植物乳的不稳定性可能与非吸附性多糖大分子的存在驱动的“排除絮凝”有关，由于蛋白质和多糖之间分子结构不一，存在广泛的不相容性，随着亚麻籽胶浓度的提高，亚麻籽胶与蛋白质相互排斥，导致体系的相分离，即“排除絮凝” [29]。
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图 4 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳TSI 的影响Figure 4. Effects of different degumming degrees on the TSI of flaxseed plant milk通过Turbiscan Lab分析ΔBS剖面随时间变化的透射光谱，其反应乳液平均尺寸的变化（聚结/絮凝）或液滴在每个位置的迁移，光谱中不同颜色的线表示乳液在不同时间的透光率变化[30]。图5中脱胶率为7.6%的亚麻籽植物乳ΔBS值在30 min内在2~41 mm的样品高度不恒定，这意味着该乳液不均匀，物理稳定性较差，上述实验结果与电位、粒径和激光共聚焦的结果可以相互验证。除了脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳，其余样品瓶子顶部区域（41~43 mm）和底部区域（0~2 mm）的ΔBS值均增加，且瓶子中间区域（2~41 mm）的ΔBS值范围较大。这可能是由于浮力增加和重力下降引起的油滴迁移，出现聚集或乳液析出导致的[26]，较大的油滴或聚集体具有更强烈的散射光[31]。
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图 5 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳ΔBS的影响Figure 5. Effects of different degumming degrees on the ΔBS of flaxseed plant milk2.7 干法脱胶对亚麻籽植物乳流变特性的影响
乳液的流变性能主要由分散相的体积分数及其尺寸和尺寸分布决定。乳液的剪切稀化行为代表了一种结构破坏，这种结构破坏可能是由于颗粒在剪切场下的空间重新分布、非球形颗粒与流场的排列或聚集体的变形和破坏而发生的[16]。由图6可知，亚麻籽植物乳的表观粘度随着剪切速率的增加而降低，表明亚麻籽植物乳表现出非牛顿流体行为[12]，表现出假塑性或剪切稀化行为，乳液剪切稀化行为不仅与连续相的非牛顿行为有关，还与分散相的抗絮凝作用有关[32]。由图6可知，随着脱胶率的增加，乳液的粘度降低。在低剪切速率下，脱胶率为7.6%的乳液显示出最低的粘度，而未脱胶的亚麻籽植物乳显示出最高的粘度。对于未脱胶的亚麻籽植物乳，在低剪切速率下，拉伸的亚麻籽胶交织在一起，较弱的剪切力无法破坏油滴之间的相互作用而形成更大的聚集体[33]，使液滴之间产生摩擦并增加粘度[34]。在高剪切速率下，不同亚麻籽胶含量的亚麻籽植物乳差异变化不大，样品的粘度几乎重叠，剪切速率的提高破坏了分子在流动方向上的聚集和排列，此外，流体的流动阻力也随着剪切速率的增加而下降，导致表观粘度下降[25]。上述实验结果与之前研究报道的，不同亚麻籽胶浓度对亚麻籽植物乳流变行为的影响趋势一致[25]。
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图 6 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳流变特性的影响Figure 6. Effects of different degrees of degumming on rheological properties of flaxseed plant milk2.8 亚麻籽植物乳的微观结构
通过脱胶处理制备的乳液微观结构如图7所示。呈现红色的区域代表被尼罗红染色的油，未脱胶的亚麻籽植物乳表现出较大液滴，而脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳显示出更小的粒径和更均匀的液滴，其结果与粒径结果一致。在未脱胶、脱胶率为2.7%和7.6%的亚麻籽植物乳中均观察到明显的絮凝现象，颗粒聚集在一起，导致结合形成更大尺寸的油滴。可能是因为亚麻籽植物乳乳化性降低，油滴容易产生絮凝或者沉淀。同时，脱胶率为7.6%的亚麻籽植物乳形成的胶态网络结构较疏松，难以实现对油滴或者其他颗粒的包裹，容易导致固体颗粒、蛋白等沉降或团聚[35]。未脱胶或脱胶率为2.7%的乳液中的多糖溶解相与乳液其他相发生“排除絮凝”，导致油滴大量聚集。然而，脱胶率为4.0%的亚麻籽植物乳中，油滴被固定在亚麻籽胶的三维网络中并均匀分布，形成稳定的乳液[36]。
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图 7 不同脱胶程度亚麻籽植物乳CLSM图像Figure 7. CLSM image of flaxseed plant milk with different degrees of degumming2.9 干法脱胶对亚麻籽植物乳营养特性的影响
由表3可知，干法脱胶促进了总固形物和蛋白质的溶出，而对总酚的影响不大，这可能是因为亚麻籽种皮坚韧，外表覆盖胶质、纤维细胞等坚固致密保护层，会限制内源蛋白质、脂肪等营养素的溶出，将其坚硬外壳破坏后，有利于蛋白质等内源性营养成分溶出[37]。
表 3 干法脱胶对亚麻籽植物乳总固形物含量、蛋白含量、总酚含量的影响Table 3. Effects of dry degumming on total solids content, protein content and total phenolic content of flaxseed plant milk样品 总固形物含量
（g/100 mL）总酚含量
（g/100 mL）蛋白含量
（g/100 mL）未脱胶 7.36±0.11b 0.22±0.02a 1.81±0.08b 2.70% 7.69±0.17ab 0.21±0.05a 2.08±0.08a 4.00% 7.59±0.23ab 0.23±0.03a 2.13±0.04a 6.30% 7.73±0.16a 0.23±0.03a 2.15±0.01a 7.60% 7.69±0.10ab 0.23±0.06a 2.12±0.06a 注：同列不同字母表示差异显著（P<0.05）。 3. 结论
由于亚麻籽胶本身黏度较大，且其在亚麻籽中含量较高，因此对湿磨工艺所得亚麻籽植物乳的理化特性如流变特性、稳定性（排除或桥联絮凝）、营养素浓度即溶出率的影响较大，而国内外相关研究较少。本研究首先通过干法脱胶技术实现亚麻籽的可控脱胶，并进一步全面探究了脱胶对亚麻籽植物乳综合品质的影响，结果表明适度脱胶可以维持亚麻籽植物乳的自稳定状态，有效促进内源营养素如蛋白质的溶出，当脱胶率为4.0%时乳液最稳定，总固形物含量和蛋白含量分别提高了3.13%和17.68%。本研究成果为亚麻籽乳自稳定性研究提供了科学理论基础，对亚麻籽全值化、高值化利用具有一定的指导意义，同时与湿法脱胶相比，干法脱胶绿色低碳属性明显，后续在高品质亚麻籽植物乳加工技术研究过程中，可继续关注物理场、生物酶解等技术，进一步提高相关亚麻籽植物乳稳定性、营养属性、感官品质等特性。
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图 1 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳粘度的影响
注：不同字母表示组间差异显著（P<0.05）。
Figure 1. Effects of different degrees of degumming on the viscosity of flaxseed plant milk
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图 2 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳zeta电位的影响
注：不同小写字母表示组间差异显著（P<0.05）；图3同。
Figure 2. Effects of different degrees of degumming on zeta potential of flaxseed plant milk
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图 3 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳D[4,3]（A）和粒径分布（B）的影响
Figure 3. Effects of different degrees of degumming on flaxseed plant milk D[4,3] (A) and particle size distribution (B)
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图 4 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳TSI 的影响
Figure 4. Effects of different degumming degrees on the TSI of flaxseed plant milk
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图 5 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳ΔBS的影响
Figure 5. Effects of different degumming degrees on the ΔBS of flaxseed plant milk
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图 6 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳流变特性的影响
Figure 6. Effects of different degrees of degumming on rheological properties of flaxseed plant milk
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图 7 不同脱胶程度亚麻籽植物乳CLSM图像
Figure 7. CLSM image of flaxseed plant milk with different degrees of degumming
表 1 脱胶次数对亚麻籽脱胶率的影响
Table 1 Effects of degumming times on the degumming rate of flaxseed
脱胶次数（次） 未脱胶 7 11 13 15 干法脱胶率（%） 0 2.7±0.02 4.0±0.01 6.3±0.05 7.6±0.02 
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表 2 不同脱胶程度对亚麻籽植物乳色度的影响
Table 2 Effects of different degrees of degumming on the color of flaxseed plant milk
样品 L* a* b* 未脱胶 94.08±0.10c 4.76±0.01a −1.45±0.04a 2.70% 98.94±0.42b 3.38±0.10b −4.78±0.22d 4.00% 99.50±0.10a 3.33±0.10b −4.51±0.06c 6.30% 99.53±0.10a 3.31±0.02b −3.68±0.02b 7.60% 99.31±0.07ab 3.17±0.04c −4.52±0.10c 注：同列不同字母表示差异显著（P<0.05）。
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表 3 干法脱胶对亚麻籽植物乳总固形物含量、蛋白含量、总酚含量的影响
Table 3 Effects of dry degumming on total solids content, protein content and total phenolic content of flaxseed plant milk
样品 总固形物含量
（g/100 mL）总酚含量
（g/100 mL）蛋白含量
（g/100 mL）未脱胶 7.36±0.11b 0.22±0.02a 1.81±0.08b 2.70% 7.69±0.17ab 0.21±0.05a 2.08±0.08a 4.00% 7.59±0.23ab 0.23±0.03a 2.13±0.04a 6.30% 7.73±0.16a 0.23±0.03a 2.15±0.01a 7.60% 7.69±0.10ab 0.23±0.06a 2.12±0.06a 注：同列不同字母表示差异显著（P<0.05）。
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