Effects of Postharvest Ripening on the Physicochemical and Nutraceutical Properties of Mango (Mangifera indica L. cv Tainung No.1)
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摘要: 采用外源乙烯利对‘台农一号’芒果进行催熟,乙烯利添加量0.1(w/w),温度30 ℃,湿度40%~50%。探讨不同催熟阶段对芒果理化指标(硬度、色泽、可滴定酸、可溶性固形物),营养成分(类胡萝卜素、维生素C、可溶性蛋白质、总糖)和香气成分的影响。结果表明,在催熟过程中果实硬度从19.76 N下降到0.99 N,可滴定酸从1.37%下降至0.27%,而可溶性固形物从12.92%上升至23.64%。当催熟时间从0 h增加至60 h,黄色指数值显著(P<0.05)增加,约85%以上的果皮颜色转为黄色,类胡萝卜素含量可升高至4.90 µg/g,维生素C从326.66 mg/100 g下降至180.00 mg/100 g,而总糖含量显著(P<0.05)增加;继续延长催熟时间至108 h,类胡萝卜素升高至10.93 µg/g;维生素C、可溶性蛋白质和总糖等变化不显著。芒果果实香气物质主要是萜烯类化合物,其中异松油烯含量最高,在催熟60 h之内其含量迅速增大,外源乙烯利加快了果实中异松油烯的合成速率。综合评价催熟后果实理化及品质特性60 h后芒果色泽、香气等指标基本达到成熟。Abstract: The present project objective was to evaluate physicochemical and nutritional changes of mango cv. Tainung No.1 that included firmness, color, total soluble solids (TSS), titratable acidity (TA), carotenoid, vitamin C (VC), protein, total sugar and aroma component at 10 postharvest ripening-stages under the ripeing condition (0.1% w/w ethephon, 30 °C, 40%~50% humidity). Results indicated a decrease in firmness from 19.76 to 0.99 N, while TA decreased from 1.37% to 0.27% and TSS increased from 12.92% to 23.64%. When the ripening time increased from 0 to 60 h, the yellow index increased significantly, and more than 85% of fruit skins turned yellow. The content of carotenoid increased to 4.90 µg/g (maximum), while VC decreased from 326.66 mg/100 g to 180.00 mg/100 g, and total sugar content increased significantly. When ripening time extended to 108 h, the content carotenoid increased to 10.93 µg/g, and the changes of the VC, soluble protein and total sugar were not significant. The aroma compounds of mango was mainly terpenes, among which the content of terpinolene was the highest, and its content increased rapidly within 60 h of ripening. Exogenous ethephon accelerated the synthesis rate of iso-terpinene in fruits. After 60 h of ripening, the color and aroma of mango reached maturity.
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芒果(Mangifera indica L.)在全世界超过90个国家都有种植,是最重要的热带水果之一[1-2]。成熟的芒果具有鲜艳的颜色,香甜的味道、浓郁的风味以及丰富的营养成分(糖、维生素、矿物质、纤维和植物化学成分),素有“热带果王”之美誉。近年来,在中国的海南省、广西省百色市、四川省攀枝花市形成芒果的主产区,以台农一号、金煌芒、红玉、贵妃、红象牙芒、鹰嘴芒和青芒等形成了“早”、“中”、“晚”熟的主栽品种,其中台农一号以其营养丰富、品质优良、丰产性好、适应性强等特点在我国海南、广西等省份得到大面积的推广种植。
芒果是一种典型的呼吸跃变型果实,在脱离母体后仍能够继续成熟。芒果的品质受成熟阶段等因素的影响,在成熟过程中发生的生理生化和分子等变化直接影响其品质性状[3]。芒果采后成熟的过程中,一方面,叶绿素的消解及类胡萝卜素的生物合成导致其果皮和果肉颜色的变化,细胞壁降解酶活性增加导致细胞壁的变化,总酚含量的变化[4]、维生素C含量的下降,以及总可溶性固体增加等[5],于此同时,果实的成熟,芳香性物质的增多,果实香气愈发浓烈;另一方面,随着果实的成熟和衰老,其自身的抗病性大大减弱,果实腐烂亦会加剧。一般而言,芒果采摘后自然成熟需要5~8 d[6]。外源乙稀(乙稀利)作为催熟剂已被广泛应用于具有后熟现象的园艺产品上[7],与温度、湿度及封闭状况等共同调节采后芒果的成熟时间。
优质水果的产品不仅依赖于加工技术,还依赖于对水果成熟度的合理选择,因此需加强对芒果采收后催熟过程的研究,深入探讨果实采后催熟过程中主要品质及营养的变化规律,以期获得更优质的芒果产品,并促进对健康更有益的芒果的加工。因此本文以生芒果(台农一号)为研究对象,探讨不同催熟阶段芒果理化指标、营养物质、色泽及香气成分的变化,为完善芒果采后品质调控技术提供实验依据。
1. 材料与仪器
1.1 材料与仪器
生芒果(台农一号) 采摘于广西;乙烯利 上海华谊集团华原化工有限公司;环己酮、乙腈 色谱纯,Sigma公司;2,6-二氯靛酚、抗坏血酸、草酸、牛血清蛋白、考马斯亮蓝 分析纯,上海麦克林生化科技有限公司。
Uvmini-1240紫外分光光度计、EZ-Test EZ-SX单柱式电子万能试验机 日本岛津公司;PR-201α数显糖度计 日本ATAGO公司;NR60CP精密色差仪 深圳三恩时科技有限公司;1260 Infinity高效液相色谱仪、7890B-5977A型GC-MA质谱联用仪 美国安捷伦公司;100 μm PDMS型萃取头 美国Supelco公司。
1.2 实验方法
1.2.1 芒果催熟方法
催熟方法参考梁敏华等[1],选取果形、成熟度、大小一致芒果20±1个(15 kg),将15 g乙烯利置于纸巾上,卷成一个纸球,放置于芒果中的中心位置。保持环境温度30 ℃,相对湿度40%~50%左右。每12 h取样20个芒果,每个采样时间为一个催熟期,催熟期标记为从1到10。每个催熟期的样品立即进行硬度的测试,而后打浆放置于−20 ℃的冰箱中待测。
1.2.2 果肉硬度测定
采用电子万能试验机测定样品果肉硬度,将果实赤道轴中心处果皮削去,沿中心处测定上中下三点位置的硬度取平均值。探头尖端为直径2 mm圆柱形。测定条件:前速率5 mm/s,贯入速度1 mm/s,后速度5 mm/s,最小感知力5 g,穿刺深度8 mm,硬度单位以牛顿(N)表示。
1.2.3 果皮色泽指数测定
利用色差计测定芒果表皮的中L*、a*和b*值,其中L*表示亮度,a*表示红绿度变化,b*表示黄蓝度变化。根据公式计算黄色指数。
(1) 1.2.4 可滴定酸测定
参照国标GB 12456-2008中的指示剂滴定法,以苹果酸计。称取芒果果肉匀浆100 g,定容至250 mL,在75~80 ℃水浴30 min,过滤后取50 mL样液,加入酚酞,用NaOH标准溶液滴定,微红色30 s不褪色为终点,记下消耗体积。
(2) 式中:C为NaOH浓度,mol/L;V1为滴定消耗的NaOH体积,mL;V0为吸取的样液体积,mL;K为苹果酸的换算系数,0.067;F为试样的稀释倍数;m为试样的质量,g。
1.2.5 可溶性固形物含量测定
芒果打浆过滤后采用数显糖度仪测定可溶性固形物(Total Soluble Solids,TSS)。
1.2.6 可溶性糖含量测定
参考《果蔬采后生理生化实验指导》[8]中“果蔬中可溶性糖含量的测定”苯酚-硫酸法稍作修改,以无水葡萄糖制作标准曲线,芒果匀浆(1.0 g),加入10 mL蒸馏水,沸水中煮沸提取30 min冷却、过滤,残渣加入5~10 mL蒸馏水二次煮沸10 min,过滤收集。取2 mL稀释后的样液,加入6%苯酚1.0 mL及浓硫酸5.0 mL,摇匀后室温放置20 min,待冷却后于490 nm测光值,计算总糖含量。
1.2.7 类胡萝卜素含量测定
参照Ibarra-Garza等[5]的方法略有改进,芒果匀浆(3.0 g),用80%的丙酮在避光冰浴中充分研磨,直至无色,8000 r/min离心10 min,在440 nm处测定吸收计算类胡萝卜素含量,以μg/g FW表示。
1.2.8 维生素C含量测定
将10 g果肉在冰水浴中用50 mL草酸(2%,v/v)研磨并过滤,用2,6-二氯苯酚法测定维生素C含量[9]。
1.2.9 可溶性蛋白质含量测定
参考王贵一等[10]采用的考马斯亮蓝法。芒果匀浆(2.0 g),加入5 mL蒸馏水摇匀后于4 ℃、12000 r/min离心20 min,收集上清液。取1mL上清液,加入5 mL考马斯亮蓝,混合均匀后放置20 min,在595 nm下测定吸光值,计算蛋白质含量。
1.2.10 果实香气成分分析
1.2.10.1 顶空固相萃取(HS-SPME)检测方法
取样品8.0 g样品于20 mL顶空样品瓶,密封。室温25 ℃平衡12 h,固相微萃取纤维PDMS 100 μm顶空萃取40 min,220 ℃解吸3 min进样。
1.2.10.2 气相色谱质谱联用(GC-MS)
参考刘华南等[11]的方法有所改动。色谱柱HP-5(30 m×0.25mm);载气高纯氦气:1.0 mL/min;程序升温:初始温度50 ℃保持1 min,以5 ℃/min升至250 ℃保持10 min,进样口温度250 ℃;进样方式:不分流。质谱条件:离子源温度200 ℃;EI离子源:70 eV,质量范围为m/z 35~500。
选用环己酮(0.5 mg/mL)做内标物,该成分不出现在样品香气中,出峰位置附近无干扰峰出现,且出现在组分中前部,是较为理想的内标物利用NIST标准谱库自动检索各组分质谱数据,参考有关文献资料及标准谱图对机检结果进行核对和确认,按面积归一化法计算各组分相对含量。
1.3 数据处理
取3次测定结果的平均值,所得数据采用OriginPro8.0作图。利用Duncan's新复极差检验(P<0.05),评价样品平均值之间的差异显著性。
2. 结果与分析
2.1 不同催熟阶段芒果理化指标的变化
果实的硬度反应果实的质地,是评价其采后成熟衰老程度的重要指标之一[12]。表1为不同催熟阶段芒果理化指标,如表1所示,生芒果的硬度为19.76 N,随着催熟时间的延长,其硬度呈现逐渐下降的趋势。其中,催熟时间从0 h达到48 h时,芒果的硬度下降至2.14 N,在此阶段中果肉的硬度显著性下降(P<0.05);而催熟时间从48 h达到108 h时,芒果的硬度继续下降至0.99 N,虽然硬度仍然处于下降趋势,但是与48 h相比并无显著性差异。在乙烯利的调控下,芒果的呼吸跃变可由体内乙烯触发,呼吸跃变一旦发生,果皮细胞膜通透性逐渐增大,多糖的降解及葡聚糖酶、糖苷酶和酯酶等作用下果肉发生软化[13]。
表 1 不同催熟阶段芒果理化指标Table 1. Physicochemical properity of mango at different ripening stages不同催熟阶段 硬度(N) 可滴定酸(%) TSS质量分数(%) 1 (0 h) 19.76±4.28a 1.37±0.25a 12.92±0.51a 2 (12 h) 11.07±1.91b 1.07±0.15b 16.02±0.11b 3 (24 h) 8.31±3.31c 1.04±0.06b 17.04±1.48bc 4 (36 h) 3.27±1.42d 0.87±0.12bc 18.25±0.92bc 5 (48 h) 2.14±0.69e 0.67±0.06cd 18.84±2.32cd 6 (60 h) 1.88±0.67e 0.64±0.15cd 21.36±1.73ef 7 (72 h) 1.64±0.53e 0.54±0.06de 23.64±0.91fg 8 (84 h) 1.41±0.47e 0.40±0.01e 23.85±1.03fg 9 (96 h) 1.17±0.24e 0.50±0.09ef 24.13±0.82g 10 (108 h) 0.99±0.18e 0.27±0.06f 23.64±1.53g 注:同一列内不同字母表示各成熟期之间有统计学差异(P<0.05)。 采后催熟过程中芒果可滴定酸和TSS的变化如表1所示,芒果在催熟过程中,可滴定酸的含量呈现下降趋势,从1.37%下降至0.27%,催熟时间从0 h达到24 h的过程中,可滴定酸下降显著(P<0.05),催熟期间可滴定酸度的下降归因于芒果中的有机酸作为呼吸底物的被氧化分解为糖,促进了有机酸的分解[5]。于此同时,芒果催熟过程中TSS呈现上升趋势,果肉中TSS质量分数到催熟72 h内快速增大,从12.92%上升至23.64%,继续增加催熟时间,其TSS含量相对变化不明显,这与先前的报道相类似,梁敏华等采用外源乙烯催熟“圣心”芒果,其TSS也随着催熟时间的延长呈现上升趋势。TSS的增加可能是由于淀粉转化为葡萄糖和果糖,而葡萄糖和果糖是果实呼吸过程中的底物[14-15]。
2.2 不同催熟阶段芒果果皮色泽的变化
颜色是芒果成熟度最直接的感官指标[16]。由图1可见,随着催熟时间的延长,芒果果皮的颜色由绿色逐渐转变为黄色、橙色。大量样本的基础上由图1可观察到当催熟时间达到60 h以后,约85%以上的果皮颜色均转为黄色。图2为不同催熟阶段芒果表皮黄色指数的变化,色差仪检测的指标中,a*为果实表皮由红色转为绿色的色泽指标,b*为果实表皮由黄色转为蓝色的色泽指标,根据式(1),YI是黄色指数即反应果皮的发黄程度。从图2中可以明显发现,未经催熟的芒果表皮的黄度值为112.17,在催熟至12 、48 及108 h时,其黄度值均显著增加至119.71、134.38和146.66(P<0.05),说明随着催熟程度的增加,芒果果皮的颜色逐渐转黄,这与果肉和果皮中类胡萝卜素的增加有一定的关联[17],随着芒果的成熟胡萝卜素在质体中合成并积累,促使果皮和果肉的颜色转黄。
2.3 不同催熟阶段芒果营养品质的变化
类胡萝卜素作为一种脂溶性色素,具有抗氧化、免疫调节、抗癌、延缓衰老等功效,在水果中作为一种重要的功能因子目前逐渐被人们所重视[18]。表2为不同催熟阶段芒果中主要营养成分的变化。如表2所示,芒果中的类胡萝卜素含量在催熟过程变化分为三个阶段,第一个阶段从0 h到催熟48 h,在这个过程中类胡萝卜素含量虽有所波动,但是并无显著性差异;第二个阶段从当催熟60到84 h,催熟至60 h后类胡萝卜素含量可升高至4.90 µg/g,显著高于第一个阶段的;第三个阶段催熟至96 h之后,类胡萝卜素的含量进一步上升,当催熟至108 h时,含量可达到最高10.93 µg/g,与0 h(3.37 µg/g)相比含量上升了3倍。报道显示芒果中存在的类胡萝卜素主要包含反式-β-胡萝卜素、顺式-叶黄素、玉米黄素、反式-紫黄素、反式-α-胡萝卜素、反式-β-隐黄质、13或15-顺-α-胡萝卜素、9-顺-β胡萝卜素、顺-玉米胡萝卜素和13-顺-β胡萝卜素等物质[19]。因此为了探讨催熟过程中类胡萝卜素代谢趋势,其被认为是总胡萝卜素和总叶黄素的总和。芒果催熟过程中,颜色中黄度的变化与中果皮组织中类胡萝卜素的积累和胡萝卜素的形成有关。许多报道已经证明随着芒果的成熟胡萝卜素在质体中合成并积累,其合成基因是在组织成熟过程中激活的,短时间内可以迅速累积至高浓度[20-21]。但是从表2中却发现在催熟60 h内,其类胡萝卜素的含量并无显著变化,甚至还有下降的趋势。这主要是因为类胡萝卜素中另外一类物质,叶黄素作为一种植物激素在果实成熟过程中参与不同的代谢变化,如细胞壁代谢和果实软化、糖代谢、酸代谢和乙烯代谢。而叶黄素是脱落酸生产的前体,而在果实催熟过程中叶黄素含量会发生下降是由于脱落酸大量的形成。因此,在催熟60 h内类胡萝卜素的变化不大,而随着催熟时间的延长,其胡萝卜素的累积进一步增加,从而导致其含量上升。
表 2 不同催熟阶段芒果营养成分的变化Table 2. Changes of nutritional ingredients of mango at different ripening stages不同催熟阶段 类胡萝卜素(µg/g) 维生素C(mg/100 g) 蛋白质(mg/g) 可溶性糖(mg/mL) 1 (0 h) 3.37±0.85ab 326.66±23.08a 0.14±0.01a 73.93±2.35a 2 (12 h) 2.67±0.85a 273.33±23.10b 0.41±0.03b 83.93±3.91b 3 (24 h) 2.24±0.58a 240.00±20.11bc 0.46±0.08bc 93.74±5.52c 4 (36 h) 3.29±0.65ab 214.10±28.28cd 0.59±0.04cd 104.71±6.53d 5 (48 h) 2.48±0.17a 233.33±11.55c 0.62±0.13d 123.55±10.43e 6 (60 h) 4.90±1.45b 180.00±30.25de 0.87±0.12e 136.71±1.75f 7 (72 h) 3.96±0.55b 166.66±23.08ef 1.07±0.02f 142.84±3.87fg 8 (84 h) 3.53±0.35b 160.56±28.25ef 1.12±0.11f 142.90±1.67fg 9 (96 h) 8.94±1.88c 153.33±11.25ef 1.12±0.02f 140.13±1.01f 10 (108 h) 10.93±1.35d 126.66±11.58f 1.10±0.08f 149.48±0.28g 注:同一列内不同字母表示各成熟期之间有统计学差异(P<0.05)。 作为水果中重要的抗氧化物质抗坏血酸(维生素C)的变化如表2所示,随着催熟时间的延长,芒果中维生素C的含量呈现下降趋势。在前60 h内,其维生素C的下降速度很快,从326.66 mg/100 g(0 h)下降至180.00 mg/100 g(60 h),约45%的维生素C损失。然而60 h之后,其含量虽然下降,但其下降并无显著性差异,尤其是从72到96 h阶段内。虽然有报道显示,果实成熟过程中产生的乙烯能增加抗坏血酸含量,促进果实成熟[5]。但是累积的维生素C在水果存放过程中也会参与不同的反应从而被消耗[22]。例如,它可以用来中和自由基,用于植物激素(乙烯和赤霉素)的生物合成,作为草酸和酒石酸生物合成的底物,叶黄素循环中被紫黄素脱环氧酶氧化等。这就解释了在芒果催熟过程中维生素C下降的主要原因。
芒果中蛋白质主要集中在芒果核中,其干物质含量可达到6%~13%[23]。而在果肉中含量相对较低,刚刚采摘下来的芒果中仅有0.14 mg/g,在催熟过程中蛋白的含量呈现上升趋势,从0.14 mg/g(0 h)上升至1.07 mg/g(72 h),而72 h之后几乎不再变化。
芒果催熟过程中可溶性糖含量的变化如表2所示,随着催熟时间的延长,其含量呈现增加的趋势,尤其是在0~60 h之间,含量迅速增加,从73.93 mg/mL上升至136.71 mg/mL,随着催熟时间的进一步延长其含量相对变化不大。增加的主要原因为在催熟过程中,由于酶的作用,淀粉逐渐转化为糖,淀粉的含量下降,果实甜度增加[24]。
2.4 不同催熟阶段芒果香气成分的变化
芒果果肉的香气成分采用HS-SPME-GC-MS法进行指纹识别。图3是芒果果实在催熟不同阶段挥发物成分的总离子流图(TIC图)。结合NIST2011谱库采用计算机检索,将TIC中峰的质谱碎片图与文献进行核对[25-26],以鉴定出香气成分的具体物质。从检测到香气成分的数量上来看,生芒果果肉中的香气成分被检测到的仅仅只有43种,随着催熟时间的延长,达到24 h时,检测到50种香气成分,进一步延长催熟时间(60 h),74种香气成分被检测出来,直到84 h时,香气成分的种类达到最高的78种,然而不能简单的从香气成分的数量上来判断种类多的一定风味最强,因为不同化合物的相对气味强度会影响总感知强度[27],因此需进一步对其相对含量进行分析。从检测到的香气成分的种类来看,主要为萜烯类、烯烃类、芳香烃类、烷烃类、醇类、醛类、脂类和酮类共8大类,其中萜烯类无论是在数目还是总含量上,在不同催熟阶段的芒果肉中含量均是最高的。根据对芒果果肉香气物质的鉴定及含量的测定,表3列出了其中含量较高的11种化合物,从表中可以明显的发现3-蒈烯、4-蒈烯和异松油烯的相对含量较高,对形成芒果特有的香气都有重大的贡献[28-29],其中异松油烯相对含量最高,这与前期的报道结果相类似[14,30],如小台芒中异松油烯的含量也可达到20%以上,说明异松油烯对于台农一号的特征香气成分贡献最大,需进一步探讨其在催熟过程中的变化规律。
表 3 成熟芒果果实(108 h)中主要挥发物质的鉴定Table 3. Identification of main volatile components in mango fruit (108 h)序号 化合物名称 化学式 CAS号 浓度(mg/mL) 1 正丁酸 C4H8O2 107-92-6 0.055 2 反式-3-己烯-1-醇 C6H12O 928-97-2 0.027 3 月桂烯 C10H16 123-35-3 0.051 4 2-蒈烯 C10H16 1000149-94-6 0.013 5 3-侧柏烯 C10H16 2867-05-2 0.039 6 3-蒈烯 C10H16 13466-78-9 0.135 7 4-蒈烯 C10H16 29050-33-7 0.108 8 邻异丙基甲苯 C10H14 527-84-4 0.029 9 萜品烯 C10H16 99-85-4 0.017 10 异松油烯 C10H16 586-62-9 1.011 11 正十一烷 C11H24 1120-21-4 0.069 因此,以异松油烯为研究对象,选取环己酮作为内标进行定量分析。图4为不同催熟阶段芒果果肉中异松油烯含量的变化。从图4中可以看出,随着催熟时间的延长,其含量呈现增加的趋势。未催熟的芒果中异松油烯的含量仅为0.5171 mg/mL时,当催熟时间达到36 h时,其含量显著(P<0.05)增加至0.9031 mg/mL,进一步增加催熟时间至60 h时,异松油烯的含量达到最大值1.0508 mg/mL,随后继续延长催熟时间,异松油烯的含量反而有所下降,但是并不明显,且均高于48 h的含量。以上结果说明,在前60 h之内,外源乙烯利加快了果实中异松油烯的合成速率,对其合成起到促进的作用。植物果实中的香气是在成长发育过程中以脂肪酸、碳水化合物或氨基酸等物质为前体,经酶修饰而形成[30]。芒果果肉中的特色香气异松油烯及色泽的主要成分类胡萝卜素的合成代谢都是以异戊二烯为前体物质,遵循类异戊二烯生物合成途径[31-32]。因此,结合表2中类胡萝卜素的变化规律,发现和异松油烯的有所类似,生芒果采摘后成熟过程中,色泽和香气是其成熟度的两个重要的外在表现形式,两者的变化往往是同步进行的。
3. 结论
“台农一号”芒果在乙烯利的催熟下,芒果的理化指标、营养品质及香气成分等都发生了显著的变化。其中硬度和可滴定酸随着催熟时间的增加而下降,TSS质量分数升高。催熟0~60 h之内,约85%以上的果皮颜色均转为黄色;类胡萝卜素含量变化不大;维生素C下降速度明显,损失约45%;总糖含量迅速增加。进一步延长催熟时间,类胡萝卜素在108 h时,含量可达到最高10.93 µg/g;维生素C虽然下降但不显著。芒果果实香气物质主要是萜烯类化合物,其中异松油烯含量最高,在催熟60 h之内其含量迅速增大,外源乙烯利加快了果实中异松油烯的合成速率。从色泽和香气等数据说明60 h的催熟后芒果已经基本达到成熟的特性,可依据芒果产品需求和加工特性来选择合适的催熟时间,本研究结果可为芒果果实采后催熟及加工特性提供有利的理论依据。
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表 1 不同催熟阶段芒果理化指标
Table 1 Physicochemical properity of mango at different ripening stages
不同催熟阶段 硬度(N) 可滴定酸(%) TSS质量分数(%) 1 (0 h) 19.76±4.28a 1.37±0.25a 12.92±0.51a 2 (12 h) 11.07±1.91b 1.07±0.15b 16.02±0.11b 3 (24 h) 8.31±3.31c 1.04±0.06b 17.04±1.48bc 4 (36 h) 3.27±1.42d 0.87±0.12bc 18.25±0.92bc 5 (48 h) 2.14±0.69e 0.67±0.06cd 18.84±2.32cd 6 (60 h) 1.88±0.67e 0.64±0.15cd 21.36±1.73ef 7 (72 h) 1.64±0.53e 0.54±0.06de 23.64±0.91fg 8 (84 h) 1.41±0.47e 0.40±0.01e 23.85±1.03fg 9 (96 h) 1.17±0.24e 0.50±0.09ef 24.13±0.82g 10 (108 h) 0.99±0.18e 0.27±0.06f 23.64±1.53g 注:同一列内不同字母表示各成熟期之间有统计学差异(P<0.05)。 表 2 不同催熟阶段芒果营养成分的变化
Table 2 Changes of nutritional ingredients of mango at different ripening stages
不同催熟阶段 类胡萝卜素(µg/g) 维生素C(mg/100 g) 蛋白质(mg/g) 可溶性糖(mg/mL) 1 (0 h) 3.37±0.85ab 326.66±23.08a 0.14±0.01a 73.93±2.35a 2 (12 h) 2.67±0.85a 273.33±23.10b 0.41±0.03b 83.93±3.91b 3 (24 h) 2.24±0.58a 240.00±20.11bc 0.46±0.08bc 93.74±5.52c 4 (36 h) 3.29±0.65ab 214.10±28.28cd 0.59±0.04cd 104.71±6.53d 5 (48 h) 2.48±0.17a 233.33±11.55c 0.62±0.13d 123.55±10.43e 6 (60 h) 4.90±1.45b 180.00±30.25de 0.87±0.12e 136.71±1.75f 7 (72 h) 3.96±0.55b 166.66±23.08ef 1.07±0.02f 142.84±3.87fg 8 (84 h) 3.53±0.35b 160.56±28.25ef 1.12±0.11f 142.90±1.67fg 9 (96 h) 8.94±1.88c 153.33±11.25ef 1.12±0.02f 140.13±1.01f 10 (108 h) 10.93±1.35d 126.66±11.58f 1.10±0.08f 149.48±0.28g 注:同一列内不同字母表示各成熟期之间有统计学差异(P<0.05)。 表 3 成熟芒果果实(108 h)中主要挥发物质的鉴定
Table 3 Identification of main volatile components in mango fruit (108 h)
序号 化合物名称 化学式 CAS号 浓度(mg/mL) 1 正丁酸 C4H8O2 107-92-6 0.055 2 反式-3-己烯-1-醇 C6H12O 928-97-2 0.027 3 月桂烯 C10H16 123-35-3 0.051 4 2-蒈烯 C10H16 1000149-94-6 0.013 5 3-侧柏烯 C10H16 2867-05-2 0.039 6 3-蒈烯 C10H16 13466-78-9 0.135 7 4-蒈烯 C10H16 29050-33-7 0.108 8 邻异丙基甲苯 C10H14 527-84-4 0.029 9 萜品烯 C10H16 99-85-4 0.017 10 异松油烯 C10H16 586-62-9 1.011 11 正十一烷 C11H24 1120-21-4 0.069 -
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