Effect of 1-Methylcyclopropene Fumigation on Preservation of Broccoli and Principal Component Analysis
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摘要: 为解决采后西兰花不能及时预冷的问题,本文拟采用1 μL/L 1-甲基环丙烯(1-Methylcyclopropene,1-MCP)于20±2 ℃处理西兰花6 h,通过测定采后西兰花的基础生理生化指标及相关抗氧化酶活性,探讨采后立即1-MCP处理对西兰花的保鲜效果。结果表明:1-MCP处理能够显著提高西兰花贮藏1 d内的感官品质,抑制了呼吸强度,保持了较高的总硫代葡萄糖苷含量,提高了POD、APX、SOD活性;1-MCP处理和预冷+冷藏处理都刺激了H2O2产生,抑制了CAT活性。主成分分析结果表明:色差a*、呼吸强度、过氧化氢含量、硫代葡萄糖苷含量、CAT活性是西兰花保鲜中的关键性指标。本研究表明西兰花采后立即用1-MCP处理能够取得良好的保鲜效果,可以在无法及时预冷的情况下起到代替作用,为西兰花的冷链运输和产业化提供理论依据。Abstract: In order to solve the problem that broccoli could not be precooled in time, 1 μL/L 1-methylcyclopropene (1-MCP) was used to treat broccoli at 20±2 ℃ for 6 h. The effects of 1-MCP on the preservation of broccoli were studied by measuring the basic physiological and biochemical indexes and related antioxidant enzyme activities. The results showed that 1-MCP treatment could significantly improve the sensory quality of broccoli during one day storage, inhibit the respiratory intensity, maintain a higher total glucosinolates content, and improve the activities of POD, APX and SOD. 1-MCP treatment and precooling and cold storage treatment stimulated H2O2 production and inhibited CAT activity. The results of principal component analysis showed that color difference a*, respiratory intensity, hydrogen peroxide content, glucosinolates content and CAT activity were the key indexes in broccoli preservation. This study showed that 1-MCP treatment could achieve good preservation effect immediately after the broccoli was harvested, which could play a substitute role when it could not be precooled in time. It would provide a theoretical basis for the cold chain transportation and industrialization of broccoli.
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Keywords:
- broccoli /
- postharvest /
- 1-methylcyclopropene /
- precooling /
- preservation effect
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西兰花(Brassica oleracea L.var. italic Planch.
)别称花椰菜,属十字花科芸薹属甘蓝的变种之一,其食用部分为绿色花球及肥嫩花茎。西兰花有“蔬菜皇冠”的美誉,其富含多种营养素及生物活性成分,如多酚类、硫代葡萄糖苷、类黄酮等[1],可以减少许多慢性心血管疾病、肿瘤的发生[2]。西兰花采后呼吸、代谢旺盛,水分易散失,运输过程中易出现机械损伤,常温下24 h花球就会发生黄化,失去商品价值[3]。我国是西兰花生产大国,但是采后及时预冷的条件依旧不足,给菜农造成的经济损失较大。 目前,1-甲基环丙烯(1-Methylcyclopropene,1-MCP)已广泛运用于果蔬的采后贮藏保鲜中。吕真真等[4]在采后用1 μL/L1-MCP密闭熏蒸桃果实24 h,发现在贮藏前期可以显著性延缓桃果实硬度下降。Gamrasni D等 [5]用1-MCP处理番茄,基于分子生物学水平的研究发现,1-MCP处理影响了蛋氨酸生物合成相关代谢物的水平,从而影响乙烯的生成与作用。唐欣影[6]研究发现,常温下1-MCP处理能有效延缓西兰花衰老,保持了叶绿素含量,降低了呼吸强度,延缓花球黄化,提高了西兰花的感官品质。许凤[7]研究发现,1-MCP处理通过调控糖代谢并维持较高水平可溶性糖来延缓西兰花的衰老,在分子生物学水平上调控一些基因的表达,从而抑制叶绿素的降解,延缓西兰花的黄化。
研究表明,1-MCP熏蒸处理在常温条件下效果最好[8],而常温1-MCP处理与及时预冷不可兼得,因而研究是否可以通过采后立即1-MCP处理提高西兰花保鲜品质,以期弥补西兰花采后无法及时冷链的问题,具有实际价值。本论文拟通过研究采后1-MCP处理的生理生化变化,数据分析比较,探讨1-MCP处理对采后3 d内西兰花的保鲜效果,以期为西兰花的冷链运输和产业化提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
西兰花 采摘于江苏盐城响水县,要求材料大小均一,成熟度一致,无机械损伤;1-MCP果蔬保鲜剂 有效浓度3.3%,购于咸阳西秦生物科技有限公司。
Dansensor CheckMate3顶空分析仪 丹麦PBI Dansensor公司;CR-400型色差仪 日本柯尼卡美能达公司;Alpha-1860A紫外-可见分光光度计 上海谱元有限公司;HH-6数显恒温水浴锅 常州国华电器有限公司;TGL 16M台式高速冷冻离心机 长沙维尔康湘鹰离心机有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 材料处理
将实验西兰花随机分为三组,每组30颗,第一组为1-MCP处理组,采用1 μL/L[9]的1-MCP在20±2 ℃条件下[8]密闭熏蒸6 h,熏蒸完毕后置于泡沫保温箱于20±2 ℃放置;第二组为预冷+冷藏处理组,采后立即0±1 ℃预冷18 h后置于4±1 ℃冰箱保存;3第三组为对照(CK)组,置于泡沫保温箱于20±2 ℃放置。分别于0、1、2、3 d取样并测定相关指标,取样部位为西兰花花球,用液氮速冻置于−20±2 ℃冰箱保存。
1.2.2 感官评定方法
采用张娜等[10]方法,对不同处理及不同贮藏天数的西兰花,从色泽、气味、组织状态、腐败情况、花蕾开放程度五个方面进行评定。单项评分为9分,精确到0.1,总分取五项均值,5分及以下判定为西兰花基本失去商品价值。具体评定标准见表1,评定结果由10名经过培训的评定员给出。
表 1 西兰花感官评定标准Table 1. Sensory evaluation standard of broccoli评分 色泽 气味 组织状态 腐败情况 花蕾开放程度 9 花球整体鲜绿 特有清香味 花球组织紧密 无腐烂 花蕾无开放 7 不超过10%花蕾变黄 轻度清香味 花球组织致密,硬挺 不超过5%花蕾出现斑点 不超过10%花蕾开放 5 10%~30%花蕾变黄 无清香味 花球外延稍软中心组织疏松 5%~10%花蕾出现斑点 10%~30%花蕾开放 3 30%~50%花蕾变黄 轻度异味 花球萎蔫超过50% 10%~20%花蕾出现斑点 30%~50%花蕾开放 1 超过50%花蕾变黄 明显腐臭味 花球全部萎蔫 超过20%花蕾出现斑点 超过50%花蕾开放 1.2.3 呼吸强度测定
取质量相同的西兰花样品置于密封罐中,室温放置1 h后,用顶空分析仪测定。
1.2.4 色差测定
使用彩色色差仪测定,每个样品取中间和四周共5个点,测定取平均值。
1.2.5 叶绿素含量测定
参照张宪政等[11]方法,稍加改进,以95%乙醇代替丙酮-乙醇混合液提取。称取磨碎样品2 g,加3~5 mL 95%乙醇,混匀,于4 ℃、12000 ×g离心后取上清液,用95%乙醇定容到10 mL,以乙醇为空白,用分光光度计在波长665、649 nm处测定吸光度。叶绿素含量的计算公式为C=Ca+Cb,Ca=13.95A665 nm−6.88A649 nm,Cb=24.96A649 nm−7.32A665 nm(Ca为叶绿素a含量,Cb为叶绿素b含量)结果以mg/g表示。
1.2.6 过氧化氢含量测定
参照张帆等[12]方法,称取磨碎样品0.5 g,用5 mL丙酮溶解,于4 ℃、10000 ×g离心15 min。吸取1 mL上清液,加入0.1 mL 20%硫酸钛和0.2 mL浓氨水,于25℃反应10 min后离心去上清液,沉淀中加2 mL丙酮,混匀离心,取沉淀加入3 mL 2 mol/L的硫酸,等沉淀完全溶解后定容至10 mL,取上清液测定415 nm下吸光值,按同样的方法制作H2O2标准曲线,最终的H2O2含量表示为C(μmol/g·FW)=(n×V)/(m×Vs),n (μmol) 为标曲中查得的H2O2浓度,V(mL)为样品提取液总体积,VS(mL)为测定时所用提取液体积,m(g)为样品质量。
1.2.7 总硫代葡萄糖苷测定
参照许凤[7]方法略加改动,用蒽酮比色法测定。称取两份0.5 g磨碎样品,测定管加2 mL蒸馏水,对照管加2 mL 40%酸化甲醇,静置20 min后,测定管和对照管同时加40%酸化甲醇至10 mL。充分混匀后,10000 ×g离心15 min,取上清液至50 mL容量瓶中,加5 mL蒸馏水混匀,加入5 mL 21.9%乙酸锌溶液和5 mL 10.6%亚铁氰化钾溶液,定容至刻度,混匀后静置30 min,用滤纸过滤,所得样品滤液备用。准确吸取测定管和对照管液体各1 mL加入冰浴的试管中,加入4 mL蒽酮-硫酸溶液混匀,沸水浴10 min,冷却10 min后,测定620 nm下吸光值。按相同方法制作葡萄糖标准曲线,根据标曲读取对应吸光度的总硫苷含量(mg),再根据样品质量获得每克样品总硫苷含量(mg/g)。
1.2.8 过氧化物酶活性测定
采用愈创木酚法[13],测定470 nm处吸光值。称取磨碎样品0.5 g,加入5 mL磷酸钠缓冲液,混匀,于4 ℃、10000 ×g离心15 min。取上清液0.05 mL,加入3 mL POD反应液(100 mmol/L pH6.0磷酸缓冲液+0.56 mL愈创木酚+0.38 mL 30%过氧化氢),每隔1 min记录570 nm下吸光值,连续记录3~5 min。以每分钟吸光值变化0.01为一个酶活力单位,结果表示为U·min−1·g−1·Fw。
1.2.9 过氧化氢酶活性测定
参照许宙等[14]方法,测定240 nm处吸光值。称取磨碎样品0.5 g,加入6 mL磷酸缓冲液,混匀,于4 ℃、10000 ×g离心15 min。取上清液0.05 mL,加入1.7 mL蒸馏水、1 mL Tris-HCL,25 ℃水浴3 min,再加入0.2 mL 200 mmol/L过氧化氢,测定时加入0.05 mL上清液,测定240 nm下吸光值变化,每隔30 s测定一次,连续反应3 min。以每分钟吸光值变化0.01为一个酶活力单位,结果表示为U·min−1·g−1·Fw。
1.2.10 抗坏血酸过氧化物酶活性测定
参照Nakano等[15]方法,测定290 nm处吸光值。称取磨碎样品0.5 g,加入6 mL 50mmol/L pH7.0 PBS缓冲液,混匀,于4 ℃、4000 r/min离心10 min,取上清液0.1 mL,加入1.4 mL APX反应液(150 mmol/L PBS缓冲液+0.3 mmol/L抗坏血酸+0.06 mmol/L过氧化氢),室温下连续反应3 min,每30 s记录一次290 nm处吸光值。以每分钟吸光值变化0.01为一个酶活力单位,结果表示为U·min−1·g−1·Fw。
1.2.11 超氧化物歧化酶活性测定
采用氮蓝四唑法[16],以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活力单位[17]。称取磨碎样品0.5 g,加入5 mL PBS缓冲液,于4 ℃、12000 ×g离心30 min,取上清液备用。测定管和对照管分别加入1.7 ml 50 mmol/L磷酸缓冲液,0.3 mL 130 mmol/L MET溶液,0.3 mL 750 μmol/L NBT溶液,0.3 mL 100 μmol/L EDTA-Na2溶液,0.3 ml 20 μmol/L核黄素溶液,测定管加0.1 ml酶液,对照管以缓冲液代替。混匀后将1支对照管置于暗处,其他各管置于4000 lx日光灯反应15 min后,立即取出,置于暗处终止反应,于560 nm处测定吸光值。
1.3 数据处理
各组实验数据重复三次,基础数据采用Excel 2013进行统计分析,采用Origin Pro2018 软件作图,采用SPSS23软件进行主成分分析(P<0.05代表显著性差异,P<0.01代表极显著差异)。
2. 结果与分析
2.1 不同处理方式对西兰花贮藏期感官品质的影响
感官评价可以直观地看出两种处理对于西兰花品质的影响。如图1所示,预冷+冷藏处理以及1-MCP熏蒸处理在采后1 d内均显著延缓了西兰花感官品质的下降(P<0.05)。与CK组比较,1-MCP处理在采后1 d内效果显著,保留了较好的感官品质。以感官评定得分低于5分来判定西兰花基本失去商品价值,1-MCP处理组在采后1 d内依旧具有良好的商品价值。
2.2 不同处理方式对西兰花呼吸强度的影响
西兰花在采后呼吸作用旺盛,因而呼吸强度是衡量其代谢的重要指标。如图2所示,贮藏1 d时,预冷+冷藏处理及1-MCP处理均显著降低了西兰花的呼吸强度(P<0.05)。但2 d 以后1-MCP处理与CK组无显著性差异。与CK组比较,1-MCP处理延缓了西兰花呼吸高峰的出现,在1 d以内能够有效提高西兰花短期贮藏的品质。
2.3 不同处理方式对西兰花色差a*、b*的影响
a*越小表明被测物越偏绿色,b*值越大表明被测物越偏黄色[18]。由图3可知,CK组与两个处理组的a*值都在上升,在第1 d,出现显著性差异(P<0.05)。CK组与1-MCP组的b*值变化规律一致,都是先上升再下降最后又上升,在贮藏第1 d出现显著性差异(P<0.05),此变化过程与叶绿素酶和脱镁叶绿素酶的活性有关,这两种酶在代谢过程中能产生合成叶绿素b的中间产物[19]。采后1 d内1-MCP处理对抑制a*值增大有效,可以显著地保持西兰花的绿色。
2.4 不同处理方式对西兰花叶绿素含量的影响
新鲜西兰花的花球呈鲜绿色,叶绿素是形成这种绿色的重要成分,故西兰花的叶绿素含量可以直观反映其新鲜程度。由图4可知,贮藏期间,西兰花叶绿素含量整体呈下降趋势。但是,在采前1 d内1-MCP处理及预冷+冷藏处理对叶绿素的影响都不显著,第2 d出现显著性差异(P<0.05)。
2.5 不同处理方式对西兰花过氧化氢含量的影响
H2O2是植物体内正常代谢或者受到胁迫刺激而产生的一种活性氧,微量H2O2可以调控植物的生理生化反应,大量H2O2则会对植物体产生伤害。由图5可知,采后3 d H2O2含量呈上升趋势,1-MCP处理和预冷+冷藏处理促进了H2O2的上升,在采后第1 d出现显著性差异(P<0.05),可能与1-MCP和预冷+冷藏处理加重了西兰花对逆境胁迫的反应有关[20]。
2.6 不同处理方式对西兰花总硫代葡萄糖苷含量的影响
硫代葡萄糖苷是西兰花富含的一种生物活性物质,其含量是衡量西兰花营养价值的重要指标[21]。由图6可见,1-MCP处理组和CK组硫苷含量的变化趋势一致,在贮藏第1 d上升后又趋于下降。在采后1 d内,1-MCP处理和预冷+冷藏处理均抑制了硫代葡萄糖苷的合成,且二者之间差异不显著,但与CK组差异显著(P<0.05)。采后第2、3 d 1-MCP处理与预冷+冷藏处理组出现显著性差异(P<0.05),可见仅在采后1 d内1-MCP代替预冷具有良好的效果。
2.7 不同处理方式对西兰花POD活性的影响
过氧化物酶是一与类血红素相关的酶,一方面可以催化H2O2反应[22],一方面与果蔬贮藏期间发生的褐变密切相关[23]。如图7所示,贮藏1 d内POD活性上升,出现显著性差异(P<0.05)。贮藏1 d内,1-MCP处理及预冷+冷藏处理都促进了POD活性的提高。POD酶活性的提高会刺激果实产生H2O2,与上文采后H2O2含量的测定结果具有一致性。
2.8 不同处理方式对西兰花CAT活性的影响
由图8可知,采后短期贮藏中,CAT活性呈上升趋势,1-MCP处理和预冷+冷藏处理抑制了CAT酶活性的上升,在贮藏第2 d才出现显著性差异(P<0.05),采后1 d内基本没有差异。结果表明,采后1 d内1-MCP处理及预冷+冷藏处理对CAT活性的抑制效果差不多。
2.9 不同处理方式对西兰花APX活性的影响
抗坏血酸过氧化物酶是植物活性代谢的重要抗氧化酶之一,其活性提高,可以降低超氧阴离子的产生速率,从而减少对细胞的损失[24]。由图9可知,采后1-MCP处理及预冷+冷藏处理促进了APX活性的增强,在贮藏第1 d出现显著性差异(P<0.05),有利于减少植物体内活性氧的积累,从而延缓植物衰老。虽然1-MCP处理对APX活性的促进效果要低于预冷+冷藏处理,但与CK组相比,在采后预冷条件不足时仍能取到很好的效果。
2.10 不同处理方式对西兰花SOD活性的影响
超氧化物歧化酶是植物代谢过程中重要的自由基清除剂之一,与植物的衰老密切相关[20]。由图10可知,采后西兰花的SOD活性呈先上升后下降趋势,1-MCP处理促进了SOD活性的提高,在贮藏第1 d出现显著性差异(P<0.05)。因此,在通过SOD作用清除自由基的这条代谢途径中,1-MCP处理的效果要优于预冷+冷藏处理。
2.11 Pearson相关性分析及主成分分析
对西兰花10种理化指标:a*(X1)、b*(X2)、呼吸强度(X3)、叶绿素(X4)、H2O2(X5)、硫代葡萄糖苷(X6)、CAT(X7)、POD(X8)、APX(X9)、SOD(X10)进行Pearson相关性分析及主成分分析,结果见表2、表3、图11。
表 2 10种测定指标的Pearson相关性分析Table 2. Pearson correlation analysis of 10 measurement indexes指标 a* b* 呼吸强度 叶绿素 H2O2 硫苷 CAT活性 POD活性 APX活性 SOD活性 a* 1.000 b* −0.796* 1.000 呼吸强度 −0.375 0.521 1.000 叶绿素 −0.293 −0.181 −0.589 1.000 H2O2 0.605 −0.177 −0.126 −0.459 1.000 硫苷 −0.225 −0.102 −0.567 0.914** −0.286 1.000 CAT活性 0.287 0.001 0.595 −0.784* 0.090 −0.763* 1.000 POD活性 −0.213 0.265 0.306 −0.444 −0.009 −0.689* 0.220 1.000 APX活性 0.515 −0.406 −0.756* 0.242 0.360 0.275 −0.346 −0.400 1.000 SOD活性 0.215 −0.059 0.328 −0.487 0.535 −0.566 0.385 0.275 0.016 1.000 注:*表示具有显著相关性(P<0.05);**表示具有极显著相关性(P<0.01)。 表 3 成分矩阵Table 3. Component matrix成分 1 2 3 X1 0.007 0.947 −0.275 X2 0.312 −0.714 0.435 X3 0.790 0.433 −0.148 X4 −0.903 −0.279 0.014 X5 0.233 0.736 0.458 X6 −0.932 −0.221 −0.003 X7 0.795 0.186 −0.482 X8 0.618 −0.187 0.314 X9 −0.526 0.653 0.263 X10 0.583 0.410 0.366 2.11.1 Pearson相关性分析
由表2,对不同处理组的西兰花10项理化指标进行Pearson相关性分析,结果如下:a*值与b*值呈显著负相关(P<0.05),表明当a*值呈负值且越小,b*值越小时,西兰花的色泽越绿。呼吸强度与APX活性呈显著负相关(P<0.05),表明APX活性升高可能加快了活性氧的清除,减少植物体的氧化应激,在某种程度上减缓了呼吸作用,延缓西兰花的衰老[24]。叶绿素含量与硫代葡萄糖苷含量呈极显著正相关(P<0.01),表明通过西兰花的黄化程度可以判断它的部分营养成分的流失情况。叶绿素含量与CAT活性呈显著负相关(P<0.05),CAT活性增加,可以加快活性氧的清除,减缓对细胞的损害[17],可能在一定程度上增加了叶绿素酶等相关酶的活性,加快了叶绿素的降解。硫代葡萄糖苷含量与CAT活性及POD活性均呈显著负相关(P<0.05),因为西兰花在贮藏期间,硫苷作为营养物质不断流失,相关抗氧化酶活性提高。
2.11.2 主成分分析
对10种西兰花理化指标:a*(X1)、b*(X2)、呼吸强度(X3)、叶绿素(X4)、H2O2(X5)、硫代葡萄糖苷(X6)、CAT(X7)、POD(X8)、APX(X9)、SOD(X10)进行主成分分析,主成分见图11,特征矩阵见表3。以特征值大于1,提取出3个主成分,累积贡献率为80.5%,可以代表原始数据的绝大部分信息。
由图11、表3可知,第一主成分贡献率为40.9%,呼吸强度(X3)载荷0.790、叶绿素(X4)载荷-0.903、硫代葡萄糖苷(X6)载荷−0.932、CAT(X7)载荷0.795占比最高;结合表2,由于叶绿素和硫代葡萄糖苷呈极显著正相关(P<0.01),且二者与CAT活性呈显著负相关(P<0.05),所以只提取硫代葡萄糖苷和呼吸强度作为代表性指标,分别为营养指标和代谢指标。由图11,第二主成分贡献率为29.3%;由表3,a*(X1)载荷0.947、H2O2(X5)载荷0.736、b*(X2)载荷−0.714占比最高;结合表2,由于a*值与b*值呈显著负相关(P<0.05),所以提取a*、H2O2为代表性指标,分别为品质指标和抗氧化指标。第三主成分贡献率为10.3%;由表3,CAT(X7)载荷−0.482占比最高,提取为代表性抗氧化指标。综上,本试验提取a*(X1)、呼吸强度(X3)、H2O2(X5)、硫代葡萄糖苷(X6)、CAT(X7)作为评定西兰花感官品质的核心指标。
2.11.3 综合评价
以3个主成分作为自变量,感官品质得分作为因变量,进行多元线性回归分析,得到感官品质与各理化指标的线性回归模型(R2=0.802,P<0.05)如下:
Y=6.321−0.254X1+0.186X2−0.403X3+0.359X4+0.035X5+0.354X6−0.527X7−0.047X8−0.023X9−0.088X10
此模型消除了回归分析中相关性带来的误差,有助于根据各因子的占比,更好地观测影响西兰花感官品质的理化指标。
3. 讨论与结论
西兰花采后生理代谢旺盛,衰老迅速,主要体现在呼吸作用旺盛,营养物质降解,花球黄化、开花等方面[25]。本实验表明,采后一天内,1-MCP处理显著抑制了色差a*值的增加,在贮藏前期显著延缓了叶绿素的降解,与陈锦等[26]采用低温贮藏研究龙眼果实的耐贮性研究结果一致。叶绿素含量影响西兰花花球的黄化和营养状况[27],其降解与有关叶绿素酶活性密切相关。谢晓宇等[28]研究发现,预冷结合低温贮藏可以显著抑制叶绿素酶活性,从而减少西兰花贮藏期间叶绿素的降解。1-MCP处理具有和预冷结合冷藏处理相同的作用。
呼吸强度是体现果蔬生理代谢活性的重要指标。果蔬采后由于逆境胁迫[29],呼吸强度会增强。西兰花属于呼吸跃变型果实,采后会出现呼吸高峰,呼吸强度呈先上升后下降趋势[30]。本实验研究表明,1-MCP处理显著降低了西兰花贮藏期间的呼吸强度,延缓了呼吸高峰的出现。用1-MCP处理桃[31]、番石榴[32]、番茄[33]和娃娃菜[34]等都显著降低了果蔬的呼吸强度,与本实验研究结果一致。
硫代葡萄糖苷主要存在于十字花科植物中,是一种富含氮、硫的植物刺激代谢产物,可以赋予植物特殊的风味[35],并且具有一定的生物活性,可以起到抗肿瘤的作用[36]。本实验的1-MCP处理显著延缓了西兰花硫代葡萄糖苷含量的下降,保持了西兰花贮藏期间的营养品质。
一般情况下,植物体内的活性氧(ROS)代谢处于动态平衡状态,逆境胁迫会使植物体内的ROS代谢失衡,导致其在植物体内蓄积,造成氧化伤害[37-38]。本实验1-MCP处理调节了西兰花的抗氧化系统,提高了相关抗氧化酶的活性,加快了植物体对活性氧自由基的清除能力,有效延缓了西兰花的衰老。千春录等[39]用1-MCP处理猕猴桃发现显著提高了SOD、APX活性。王玉玲等[40]研究发现1-MCP处理蓝莓显著抑制了果实总抗氧化能力的下降。本实验发现,在采后1 d内1-MCP处理促进了西兰花POD活性的上升。同时本实验1-MCP处理及预冷+冷藏处理均未能降低H2O2的含量,可能是处理加剧了西兰花贮藏前期的氧化应激[20]。Mittler[41]研究发现H2O2可以诱导POD的合成,从而增加POD活性,与本实验结果一致。
本研究表明,采后用1 μL/L 1-MCP熏蒸6 h并于20 ℃放置,在采后1 d内,有效抑制了西兰花呼吸强度,抑制了a*值的增加,维持了西兰花的感官品质;对叶绿素和硫代葡萄糖苷的含量的影响与预冷+冷藏处理的效果相同,无显著性差异;对于H2O2和CAT的作用与预冷+冷藏组趋势一致,都可能引起了西兰花的氧化应激;同时,1-MCP处理显著提高了POD、APX、SOD活性,提高了西兰花的抗氧化能力,在一定程度上延缓了西兰花的衰老,显著延长了西兰花的货架期。主成分分析表明,色差a*、呼吸强度、H2O2、硫代葡萄糖苷和CAT活性是影响西兰花保鲜效果的关键性指标。综上,西兰花采后用1-MCP处理效果比较理想,可以在预冷条件不足的情况下起到替代作用,本实验为后续的西兰花的冷链运输和工业化提供了理论依据。
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表 1 西兰花感官评定标准
Table 1 Sensory evaluation standard of broccoli
评分 色泽 气味 组织状态 腐败情况 花蕾开放程度 9 花球整体鲜绿 特有清香味 花球组织紧密 无腐烂 花蕾无开放 7 不超过10%花蕾变黄 轻度清香味 花球组织致密,硬挺 不超过5%花蕾出现斑点 不超过10%花蕾开放 5 10%~30%花蕾变黄 无清香味 花球外延稍软中心组织疏松 5%~10%花蕾出现斑点 10%~30%花蕾开放 3 30%~50%花蕾变黄 轻度异味 花球萎蔫超过50% 10%~20%花蕾出现斑点 30%~50%花蕾开放 1 超过50%花蕾变黄 明显腐臭味 花球全部萎蔫 超过20%花蕾出现斑点 超过50%花蕾开放 表 2 10种测定指标的Pearson相关性分析
Table 2 Pearson correlation analysis of 10 measurement indexes
指标 a* b* 呼吸强度 叶绿素 H2O2 硫苷 CAT活性 POD活性 APX活性 SOD活性 a* 1.000 b* −0.796* 1.000 呼吸强度 −0.375 0.521 1.000 叶绿素 −0.293 −0.181 −0.589 1.000 H2O2 0.605 −0.177 −0.126 −0.459 1.000 硫苷 −0.225 −0.102 −0.567 0.914** −0.286 1.000 CAT活性 0.287 0.001 0.595 −0.784* 0.090 −0.763* 1.000 POD活性 −0.213 0.265 0.306 −0.444 −0.009 −0.689* 0.220 1.000 APX活性 0.515 −0.406 −0.756* 0.242 0.360 0.275 −0.346 −0.400 1.000 SOD活性 0.215 −0.059 0.328 −0.487 0.535 −0.566 0.385 0.275 0.016 1.000 注:*表示具有显著相关性(P<0.05);**表示具有极显著相关性(P<0.01)。 表 3 成分矩阵
Table 3 Component matrix
成分 1 2 3 X1 0.007 0.947 −0.275 X2 0.312 −0.714 0.435 X3 0.790 0.433 −0.148 X4 −0.903 −0.279 0.014 X5 0.233 0.736 0.458 X6 −0.932 −0.221 −0.003 X7 0.795 0.186 −0.482 X8 0.618 −0.187 0.314 X9 −0.526 0.653 0.263 X10 0.583 0.410 0.366 -
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