Effect of Arginine Treatment on Disease Resistance to Alternaria Rot of Postharvest Winter Jujube
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摘要: 为研究精氨酸(Arginine,Arg)处理对采后冬枣果实抗病性的影响,用不同浓度的Arg溶液(0、20、200、1000 μmol/L)浸泡枣果实,再对处理后的枣果实进行互隔交链孢(Alternaria alternata)接种,测定贮藏期间病斑直径、抗病相关酶的活性以及黄酮、多酚、木质素的含量。结果表明,Arg处理可以显著减缓冬枣接种A.alternata后病斑直径的扩展,进一步研究表明Arg处理能诱导其苯丙氨酸解氨酶(phenylalamineammonialyase,PAL)、过氧化物酶(peroxidase,POD)、β-1,3-葡聚糖酶(β-1,3-glucanase,GLU)、几丁质酶(chitinase,CHI)活性的上升,其中200 μmol/L Arg处理的抗病相关酶活性最高。同时,Arg处理能提高枣果实中黄酮、多酚和木质素的含量,且200 μmol/L Arg处理组的黄酮、多酚和木质素含量最高。由此表明,Arg处理通过提高抗病相关蛋白酶(PAL、POD、GLU、CHI)的活性以及黄酮、多酚、木质素的含量来增强采后冬枣果实的抗病能力,有望成为一种新的防腐保鲜剂应用于冬枣果实的防腐保鲜。Abstract: In order to study the effect of arginine (Arg) treatment on disease resistance of postharvest winter jujube fruit, the fruits were soaked in Arg solutions at different concentrations (0, 20, 200, 1000 μmol/L), then Alternariaalternata challenge inoculation was performed on the treated jujube fruits, and later the lesion diameter, the activities of resistance-related enzymes and the contents of flavones, polyphenols and lignin were determined. The results showed that Arg treatment significantly slowed down the expansion of the lesion diameter in the jujube fruitsinoculated with A.alternata. Further studies showed that Arg treatment induced the increase of the activities of phenylalamine ammonialyase (PAL), peroxidase (POD), β-1,3-glucanase (GLU) and chitinase (CHI), among which Arg treatment at 200 μmol/L was the most active concentration. At the same time, Arg treatment increased the contents of flavones, polyphenols and lignin in winter jujube, and the contents of flavones, polyphenols and lignin in the fruits treated by 200 μmol/L Arg were the highest. Therefore, Arg treatment enhanced the disease resistance of postharvest winter jujube fruits by increasing the activities of disease-resistant enzymes (PAL, POD, GLU, CHI) and the contents of flavones, polyphenols and lignin,and it can be a promising alternative that will be used in the preservation of postharvest winter jujube.
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Keywords:
- arginine (Arg) /
- winter jujube /
- Alternaria alternata /
- disease resistance
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冬枣果实营养丰富,含有人体所需的19种氨基酸和钾、铁、铜等多种微量元素,还含有VC、VB1、VB2等多种维生素[1],口感脆甜,鲜食品质极佳,深受人们喜爱。冬枣在贮藏期间最易受互隔交链孢(Alternaria alternata)侵染而产生黑斑病,因此,采后冬枣的防腐保鲜一直是人们研究的热点[2]。目前,国内外研究的保鲜方法主要包括物理、化学和生物保鲜法[3]。物理保鲜方法如气调[4]和减压技术[5]能有效抑制果实的呼吸,减慢果实水分的蒸腾速度和抑制微生物活动,延缓果实的衰老进程,减少腐烂。化学处理方式如1-MCP[4]或CaCl2[6]处理也能有效保持冬枣的硬度,降低冬枣腐烂率,减缓冬枣中可滴定酸和VC含量的下降。常用生物制剂保鲜也能够有效抑制冬枣的腐烂,如壳聚糖[7]、金针菇蛋白酶解肽[8]、银杏叶提取液[9]等处理在诱导抗病方面也有一定效果。目前在产业中应用较多的冬枣防腐保鲜技术包括冷藏[10]、气调包装[4]。虽然,上述保鲜技术都具有一定的效果,但是考虑到经济、便捷等因素,寻求更为实用方便的诱导抗病防腐保鲜技术就显得更为迫切。
精氨酸(Arginine,Arg)是多胺和NO合成的前体物质,二者在多种果蔬的生物胁迫和非生物胁迫中有着重要作用[11]。目前,Arg多用于鹤望兰[12]、月季[13]、百合[14]等鲜花的保鲜处理;也有研究发现采前Arg处理能够诱导番茄果实的抗病性[15],同时发现内源NO浓度与处理后的苯丙氨酸解氨酶(phenylalamineammonialyase,PAL)、多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)、几丁质酶(chitinase,CHI)及β-1,3-葡聚糖酶(β-1,3-glucanase,GLU)活性呈正相关,说明Arg通过影响NO生物合成和调控防御酶的活性来诱导果实的抗病性。另外,Arg处理对番茄灰霉病也有一定的抑制效果[15]。有研究还发现,Arg处理抑制了白蘑菇贮藏期间PPO和PAL活性,诱导了超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)和过氧化物酶(peroxidase,POD)活性,增强了白蘑菇的抗病能力[16-18]。但是关于Arg处理诱导采后冬枣果实抗病性方面的研究还很少,而且也缺乏系统深入的研究。
本研究以冬枣果实为试验材料,通过不同浓度Arg溶液浸泡处理,研究损伤接种A.alternata后,冬枣果实病斑直径、抗病相关酶活性(PAL、POD、GLU、CHI)以及抗病物质(黄酮、多酚、木质素)的变化,以期丰富Arg处理在果实采后抗病保鲜方面的理论研究,并为冬枣的采后防腐保鲜提供新思路。
1. 材料与方法
1.1 材料与设备
供试白熟期冬枣果实 于2020年9月27日采自山西省临汾市尧都区尧乡冬枣种植基地,采摘后迅速用纸箱包装,运输至实验室,室温(26±2 ℃)贮藏备用;供试Arg 购自上海阿拉丁试剂公司;A.alternata(BNCC115062) 购自北纳生物有限公司,于马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)中保存,使用前于PDA培养基上28 ℃培养10 d。
H1850R高速台式冷冻离心机 湘南湘仪实验室仪器开发有限公司;SpectraMax M2/M2e酶标仪 上海普迪生物科技有限公司;IMS-40全自动雪花制冰机 常熟市雪科电器有限公司;759S紫外可见分光光度计 上海棱光技术有限公司;MDF-U53V超低温冰箱 日本三洋集团;OLYMPUS-CX31生物显微镜 山东博科再生医学有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 孢子悬浮液制备
取28 ℃培养10 d的链格孢菌,加入无菌水(含0.05% Tween-20)后,刮下培养皿上的孢子,三层纱布过滤后,在显微镜下用血球计数板计数、稀释,配制成1×105个/mL的孢子悬浮液。
1.2.2 果实浸泡、损伤接种处理
用2%次氯酸钠溶液浸泡枣果实2 min,自来水冲洗后自然晾干。将晾干后的果实分为四组,每组200个,然后分别在0、20、200、1000 μmol/L Arg溶液浸泡10 min,取出自然晾干,装于塑料盒中,于室温(26±2 ℃)、相对湿度90%下贮藏24 h。24 h后用75%的酒精均匀喷洒消毒,之后用直径为3 mm的打孔器在枣果实中部打一个直径为3 mm,深度为2 mm的孔,取5 μL配置好的A.alternata孢子悬浮液(1×105个/mL)接种于孔内。接种完后装入塑料盒中用聚乙烯薄膜封口于室温(26±2 ℃)、相对湿度90%下贮藏。定期观测病斑直径,每次观测60个果实,重复三次。每隔1 d取10个枣果实损伤部位皮下0.2~10 mm范围内的果肉存放于超低温冰箱(−80 ℃)内用于测定后期指标。
1.2.3 测定方法
1.2.3.1 病斑直径测定
利用十字交叉法测量冬枣的病斑直径,每次测量60个冬枣病斑的横纵径,重复3次(每20个为一组),求平均值。
1.2.3.2 PAL、POD、GLU和CHI活性的测定
PAL活性的测定参照曹建康等[19]的方法,做适当修改。取4 g枣粉,加入4 mL提取液(含有40 g/L 聚乙烯吡咯烷酮(PVPP)、2 mmol/L 乙二胺四乙酸(EDTA)和5 mmol/L β-巯基乙醇)。在4 ℃、12000×g离心30 min,收集上清液。取两支试管,一支试管加入3 mL硼酸缓冲液(50 mmol/L、pH8.8),0.5 mL L-苯丙氨酸溶液(20 mmol/L)、0.5 mL酶液;另一支将酶液煮沸6 min后加入。两支试管均于37 ℃下保温10 min,加入0.1 mL HCl(6 mol/L)终止反应,在290 nm处测定吸光度值。以吸光度值增加0.01为1个PAL活性单位(U),表示为U·h−1·g−1 FW。
POD活性的测定参照曹建康等[19]的方法,稍作修改。离心管中加入3.0 g果蔬组织样品和3.0 mL提取缓冲液,于4 ℃,12000×g离心30 min,收集上清液,低温保存备用。取一支试管,反应体系包括3.0 mL愈创木酚溶液(25 mmol/L)和0.5 mL酶提取液,最后加入200 μL H2O2溶液(0.5 mol/L),同时开始计时。在波长470 nm处测定吸光度值,15 s后开始记录,每隔1 min记录一次,重复三次。以吸光度值增加1为1个过氧化物酶活性单位(U),表示为U·min−1·g−1 FW。
GLU活性的测定参照曹建康[19]的方法稍作修改。取2.0 g果蔬组织样品,加入2.0 mL经预冷的提取液(含1 mmol/L EDTA-Na2、5 mmol/L β-巯基乙醇、1 g/L L-抗坏血酸),于4 ℃,12000×g离心30 min,收集上清液。准备2支试管,分别加入100 μL昆布多糖(4 g/L),1支试管中加入100 μL上清液、另一支加入100 μL煮沸上清液。37 ℃保温40 min后加入1.8 mL蒸馏水和1.5 mL 3,5-二硝基水杨酸(DNS),最后用蒸馏水稀释至25 mL。测定540 nm处的吸光度值,分别记作ODS和ODC。重复三次,以每秒钟每克果蔬组织分解昆布多糖产生 1×10−9 mol葡萄糖为一个 GLU 活性单位(U),表示为U·mol·s−1·g−1 FW。
CHI活性测定参照曹建康等[19]方法并作修改。取3 g枣粉,加入4 mL预冷丙酮,于4 ℃、12000×g离心30 min。反应体系为0.5 mL乙酸-乙酸钠缓冲液(50 mmol/L、pH5.2)、0.5 mL胶状几丁质悬浮液(10 g/L)和0.5 mL酶液,对照管煮沸5 min。37 ℃水浴1 h,加0.1 mL脱盐蜗牛酶(30 g/L)继续水浴1 h,最后加0.2 mL四硼酸钾溶液(0.6 mol/L),煮沸3 min后迅速冷却,于585 nm处测定吸光度值。酶活性单位是U·mol·s−1·g−1 FW。
1.2.3.3 黄酮、多酚、木质素含量的测定
黄酮测定参考武继芸[20]的方法,稍作修改。取0.5 g果蔬组织样品,加入4.0 mL 80%的乙醇,于4 ℃,8000×g离心20 min,收集上清液待用。取0.2 mL样液,加入0.6 mL NaNO2试剂,摇匀反应5 min后加0.6 mL Al2Cl3溶液(10%),混匀后于室温下放置6 min,最后加入2 mL NaOH溶液(1 mol/L),室温下放置15 min。在510 nm处测定吸光度值。用芦丁标准品制作标准曲线,所有实验均重复测定3次。总黄酮含量以样品中所含芦丁的当量(mg·g−1 FW)来表示。
多酚测定参考Fan等[21]的方法,取0.5 g果蔬组织样品,加入4.0 mL 80%的乙醇,于4 ℃,8000×g离心20 min,收集上清液待用。取0.2 mL 样液,加入2.0 mL Folin-Ciocalteau试剂(稀释10倍),反应5 min后加入2.0 mL Na2CO3(10%),混匀后于室温下放置1.5 h,在765 nm处测定吸光度值。用没食子酸溶液制作标准曲线,所有实验均重复3次。总酚含量以样品中所含没食子酸的当量(mg·g−1 FW)来表示。
木质素测定参照常晨等[22]的方法,取1 g果蔬组织样品,加入4.0 mL 预冷的95%的乙醇混匀,于4 ℃,12000×g离心10 min,分别用95%的乙醇、乙醇:正己烷=1:2(v/v)冲洗沉淀三次。收集沉淀后加入1 mL的溴乙酰(25%),70 ℃恒温水浴30 min。加入1 mL NaOH溶液(2 mol/L)终止反应,再加入2 mL冰醋酸和0.1 mL盐酸羟胺(7.5 mol/L)。离心后取上清液0.25 mL,用冰醋酸定容至5 mL。在280 nm处测定吸光度值,所有实验均重复测定3次。木质素含量以OD280·g−1 FW表示。
1.3 数据处理
使用SPSS处理数据并进行Duncan’s多重比较分析,Origin 2019绘制图表。
2. 结果与分析
2.1 Arg处理对接种A.alternata后冬枣果实病斑直径的影响
冬枣采后接种A.alternata后病斑直径在贮藏期间呈上升趋势,由图1可知,在贮藏的20 d中,200 μmol/L Arg处理组的病斑直径最小,对照组的病斑直径最大。在贮藏的第8 d,对照组的病斑直径分别比20、200、1000 μmol/L Arg处理高57.40%、60.04%、38.28%。到第20 d时,对照组的病斑直径比处理组分别高出52.14%、66.77%、41.50%。说明Arg处理可以有效抑制接种A.alternata后枣果实病斑直径的增长。
2.2 Arg处理对冬枣果实中抗病相关酶活性的影响
PAL是冬枣抗病过程中的重要酶类,能参与植物抗病过程中多种抗病物质的合成。如图2A,在贮藏期间,20、200 μmol/L Arg处理组PAL活性在0~12 d呈上升趋势,在12~20 d呈下降趋势,在第12 d时,两个处理组酶活性分别为96.7和123.4 U·h−1·g−1,对照组PAL活性为59.9 U·h−1·g−1,比对照组高61.4%、106%。1000 μmol/L Arg处理组和对照组的PAL活性在0~16 d呈现上升趋势,16 d后下降,第16 d两组酶活性分别为56.9、70.2 U·h−1·g−1,1000 μmol/L处理组比20和200 μmol/L处理组的活性低21.5%、42.4%;对照组比20和200 μmol/L处理组的活性低3.4%、29%。
POD主要参与植物体内酚类化合物的氧化和植物细胞壁中木质素的形成过程,有助于加强细胞壁的屏障作用以限制病害的发展[22],增强植物的抗病性。如图2B所示,POD活性在贮藏期间呈现先上升后下降的趋势,各组均在第4 d出现活性高峰。贮藏期间,200 μmol/L处理组POD活性始终高于对照组,而1000 μmol/L处理组POD活性始终低于对照组。第16 d时,20、200 μmol/L处理组分别比对照组的POD活性高6.8%、18.9%。
GLU是参与果实抗病作用的重要病程相关蛋白,它可以通过水解真菌细胞壁中的葡聚糖来参与植物的防御反应[23-24]。如图2C所示,在贮藏0~4 d时,GLU活性急剧上升,在第4 d时各组活性均达到最大值,之后则呈现缓慢下降的趋势。在第4 d时,20、200、1000 μmol/L处理组比对照组的GLU活性分别高25%、31%、22%。直到20 d时,各处理组和对照组的GLU活性仍然有较大差异,各处理组的酶活性分别是对照组的10.5倍、13.75倍、6.75倍。
CHI直接作用于真菌细胞壁的主要组成成分几丁质,通过破坏真菌的细胞壁结构增强植物的抗病性。如图2D所示,在处理后0~4 d,酶活性快速上升,4 d之后,呈现逐渐下降的趋势。在处理前8 d,20、200、1000 μmol/L处理组的CHI活性均高于对照组。在第4 d时,各处理组的酶活性分别比对照组的高45%、87%和6%。总体来看,贮藏期间200 μmol/L处理组的GLU活性一直高于其他处理组和对照组。
2.3 Arg处理对冬枣果实中黄酮、多酚和木质素含量的影响
黄酮是植物中重要的抗氧化和抗病物质,黄酮含量的测定在判定抗病作用方面有重要意义。在贮藏期间,黄酮的含量先快速上升,而后变化相对平稳。由图3A可知,各处理组的黄酮含量均高于对照。到第12 d时,20、200、1000 μmol/L处理组和对照组的差异较大,各处理组分别比对照组高37.5%、41.2%、25%。到20 d时,各处理组的黄酮含量分别为1.18、1.25、1.14 mg·g−1,分别比对照组高6.3%、12.6%、2.7%。
多酚也是植物体内主要的抗氧化物质,在果实对抗采后病原菌中起着重要作用,贮藏期间呈现先上升后下降的趋势,各处理的多酚含量在接种后的整个贮藏期间均高于对照。由图3B可知,贮藏第8 d时,各组的多酚含量最高,20、200、1000 μmol/L处理组和对照组的多酚含量分别为2.93、2.99、2.83、2.67 mg·g−1,各处理组分别比对照组高9.7%、11.9%、5.9%。
木质素的沉积可以降低病原菌致病酶对寄主细胞的降解,延缓病原菌对寄主植物的侵染。如图3C所示,20、200 μmol/L处理组木质素含量在0~8 d时缓慢上升,8 d后逐渐下降,1000 μmol/L处理组木质素含量在4~8 d时缓慢上升,8 d后逐渐下降,而对照组的木质素含量在处理后前16 d一直缓慢下降,到20 d时略有升高。贮藏期间,各处理组的木质素含量均高于对照,其中,200 μmol/L处理组枣果实的木质素含量最高。各处理组均在贮藏第8 d时木质素含量最高,分别为3.68、3.72、3.64 OD280·g−1,分别比对照组高2.5%、3.6%、1.3%。
3. 讨论
Arg作为人体必需氨基酸,同时是植物体内一种重要的氮素储藏营养物,也是多胺(PA)和NO这两个重要信使分子的前体物质,与果蔬采后抗性密切相关[22]。在应对不同的生理病害时,植物细胞积聚的PA通过调控一系列转运过程和生理生化反应来抵抗病害,如PA作为抗氧化剂和自由基清除剂能减少细胞内的活性氧,防止细胞氧化损伤。NO作为抗病机制中的信号分子,已被证实与PAL、GLU和CHI等抗病酶的活性呈正相关[15]。研究表明,Arg处理可以延缓番茄[15]、白蘑菇[16]的腐烂速度,但是关于Arg处理诱导采后果蔬抗病性的研究还不深入。
病斑直径能够直观反映果实的抗病作用效果。我们的研究发现,Arg处理对接种A.alternata后冬枣的病斑直径扩展有明显的抑制作用,各处理组的病斑直径均小于对照组,这与季娜娜在研究精氨酸处理诱导番茄果实抗病性时的发现一致[24]。因此,Arg浸泡处理对抑制枣果实的黑斑病是有效的。此外,体外实验结果显示Arg对A.alternata无直接抑制作用(未发表),由此推测Arg可能通过诱导作用来增强枣果实的抗病性,并进行后续研究。
枣果实的诱导抗病性与果实中抗病相关酶活性的变化密切相关。PAL、GLU、CHI是植物抗病相关的重要酶类[25]。PAL、GLU、CHI活性的增加在诱导抗病性中起关键作用,有助于增强果实抵御病原菌入侵的能力,进而抑制病害的发生[26-27]。PAL是苯丙烷途径的初始通道酶,其活性的增加不仅与抗病有密切关系的黄酮、多酚等物质的合成有关,还参与植物细胞壁木质化,从而直接限制病原菌的生长。GLU和CHI是植物组织中两种关键的抗病相关蛋白,二者分别是真菌细胞壁中的几丁质和葡聚糖的水解酶,具有降解真菌细胞壁的能力[28-29]。POD参与植物细胞壁的构建过程,如酚类化合物的氧化、亚甲基化和木质化,这有助于加强细胞壁结构以限制病原菌的发展[30]。本研究表明,Arg浸泡处理枣果实后,其PAL、GLU、CHI活性都有明显上升,表明Arg处理通过提高抗病相关酶的活性来诱导果实产生抵抗病原菌的能力,这与季娜娜的研究结果一致[24]。而整个贮藏期间对POD的活性研究表明,适宜浓度的Arg处理(200 μmol/L)能诱导POD活性上升。因此,PAL、GLU、CHI三种酶均参与冬枣果实对A.alternata感染引发的黑斑病的防御反应。
黄酮、多酚、木质素,是植物苯丙烷代谢的重要产物,它们可以保护植物免受病原菌的侵害。黄酮和多酚不但可以直接作为抗菌剂,还可以氧化成醌类物质,进一步抑制病原菌的生长。木质素可以加固细胞壁,形成阻碍病原菌入侵的屏障,阻止病原菌的入侵[31]。本实验结果表明,Arg处理可以明显提高果实中黄酮、多酚、木质素的含量,增加枣果实对黑斑病的抗性。这与前人在番茄上的研究结果相似。当然,Arg在果实抗病中的分子作用机制以及具体的信号通路还有待进一步研究。
4. 结论
不同浓度的Arg处理均能有效抑制病原菌的扩展,提高冬枣果实的抗病能力,其中,200 μmol/L Arg处理组的病斑直径增长最慢,效果最显著。进一步研究显示,Arg处理提高了枣果实中PAL、GLU、CHI的活性,其中200 μmol/L Arg处理组的效果最好,说明Arg处理通过对枣果实中抗病相关酶活性的诱导,显著增加了果实组织中黄酮、多酚、木质素等抗病相关物质的含量。因此,Arg能有效提高枣果实对A.alternata感染引发的黑斑病的抵抗能力。
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[1] Liu Y, Su Y, Sun S G. Human tau may modify glucocorticoids-mediated regulation of cAMP-dependent kinase and phosphorylated cAMP response element binding protein[J]. Neurochemical research,2012(7):935−947.
[2] 沈雅珉, 何三宁. 鲜枣采后贮藏保鲜技术研究进展[J]. 保鲜与加工,2016,16(5):134−138. [3] 张耀君, 何宇. 冬枣保鲜技术研究进展[J]. 陕西农业科学,2018,64(1):93−97. doi: 10.3969/j.issn.0488-5368.2018.01.029 [4] 鲁奇林, 赵宏侠, 冯叙桥, 等. 气调包装贮藏对鲜枣采后贮藏生理和效果的影响[J]. 食品与发酵工业,2014,40(5):216−221. [5] 郝晓玲, 王如福. 减压贮藏对鲜枣保鲜效果的影响[J]. 粮油加工,2004(6):70−72. [6] 王大伟, 向延菊. 采后钙处理对新疆和田地区冬枣贮藏特性的影响[J]. 食品工业,2016(8):92−95. [7] Liang G B, Wang H, Zhang Y H, et al. Improving preservation effects of Taiwan jujube fruits by using chitosan coating combined with ascorbic acid during postharvest period[J]. Transactions of the chinese society of agricultural engineering,2017,33(17):304−312.
[8] 朱晶, 李星辰, 郭嘉川, 等. 金针菇酶解肽对冬枣保鲜效果的研究[J]. 陕西农业科学,2013,59(4):6−8. doi: 10.3969/j.issn.0488-5368.2013.04.002 [9] 张瑾, 王文婷, 王国霞. 银杏外种皮及银杏叶提取液对冬枣保鲜的影响研究[J]. 宁夏农林科技,2018,59(7):55−57. doi: 10.3969/j.issn.1002-204x.2018.07.022 [10] 肖黎斌, 韩军岐, 张润光, 等. 鲜枣采后生理、贮期病害及保鲜技术研究进展[J]. 陕西农业科学,2016,62(4):87−91. doi: 10.3969/j.issn.0488-5368.2016.04.028 [11] Zhang X H, Shen L, Li F J, et al. Up-regulating arginase contributes to amelioration of chilling stress and the antioxidant system in cherry tomato fruits[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture,2010,90(13):2195−2202. doi: 10.1002/jsfa.4070
[12] 邓显容. 精氨酸对鹤望兰切花的保鲜效应[J]. 现代园艺,2012(17):3−4. doi: 10.3969/j.issn.1006-4958.2012.17.001 [13] 曾长立. Al3+和精氨酸配合使用对月季切花保鲜效果的影响[J]. 北方园艺,2008(12):113−116. [14] 万茜, 曾长立, 王倩, 等. 精氨酸对百合鲜切花的保鲜效应[J]. 江汉大学学报(自然科学版),2007(3):69−72. [15] Zheng Y, Sheng J, Zhao R, et al. Preharvest L-Arginine treatment induced postharvest disease resistance to Botrysiscinerea in tomato fruits[J]. Journal of agricultural and food chemistry,2011,59(12):6543−6549. doi: 10.1021/jf2000053
[16] Li BB, Ding Y, Tang X L, et al. Effect of L-Arginine on maintaining storage quality of the white button mushroom (Agaricus bisporus)[J]. Food and bioprocess technology,2019,12(3):563−574.
[17] J R McKnight, M C Satterfifield, W S Jobgen, et al. Beneficial effects of L-arginine on reducing obesity: Potential mechanisms and important implications for human health[J]. Amino acids,2010,39(2):349−357. doi: 10.1007/s00726-010-0598-z
[18] S M Morris. Arginine metabolism: Boundaries of our knowledge[J]. The Journal of nutrition,2007,137(2):1602−1609.
[19] 曹建康, 姜微波, 赵玉梅. 果蔬采后生理生化实验指导[M]. 北京: 中国轻工业出版社, 2007: 101−105, 142−150. [20] 武继芸. 不同涂膜处理对冬枣贮藏品质和抗氧化活性的影响[D]. 天津: 天津大学, 2016. [21] Fan P, D J Huber, Su Z, et al. Effect of postharvest spray of apple polyphenols on the quality of fresh-cut red pitaya fruit during shelf life[J]. Food chemistry,2018,243:19−25. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.09.103
[22] 常晨, 程继亮, 强胜, 等. 加拿大一枝黄花茎秆木质素含量和木质素化程度的测定方法[J]. 植物生理学报,2018,54(5):917−924. [23] 杨洪强, 高华君. 植物精氨酸及其代谢产物的生理功能[J]. 植物生理与分子生物学学报,2007,33(1):1−8. [24] 季娜娜, 闵德栋, 李富军, 等. 一氧化氮合酶途径在精氨酸诱导番茄果实采后抗病性中的作用[J]. 食品科学,2018,39(1):250−257. doi: 10.7506/spkx1002-6630-201801038 [25] S Toscano, A Ferrante, C Leonardi, et al. PAL activities in asparagus spears during storage after ammonium sulfate treatments[J]. Postharvest biology and technology,2018,140:34−41. doi: 10.1016/j.postharvbio.2018.02.010
[26] Wang Y F, Yu T, Li Y C, et al. Postharvest biocontrol of Alternaria alternata in Chinese winter jujube by Rhodosporidium paludigenum[J]. Journal of applied microbiology,2010,107(5):1492−1498 (in Chinese).
[27] Liang G B, Wang H, Zhang Y H, et al. Improving preservation effects of Taiwan jujube fruits by usingchitosan coating combined with ascorbic acid during postharvest period[J]. Journal of agricultural engineering,2017,17(33):304−312.
[28] Ji C, Ku’c J. Antifungal activity of cucumber β-1, 3-glucanase and chitinase[J]. Physiological and molecular plant pathology,1996,49(4):257−265. doi: 10.1006/pmpp.1996.0053
[29] Bai Y J, Zhang P L, HangW, et al. Analysis of expression profiles of chitinase and β
-1, 3-glucanase genes in muskmelon fruit tissue inoculated with Alternaria alternata[J]. Food science,2018(2):185−191. [30] Zhang Q T, Zhang L L, Geng B, et al. Interactive effects of abscisic acid and nitric oxide on chilling resistance and active oxygen metabolism in peach fruit during cold storage[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture,2019,99(7):3367−3380. doi: 10.1002/jsfa.9554
[31] Liu Q Q, Luo L, Zheng L Q. Lignins: Biosynthesis and biological functions in plants[J]. International journal of molecular science,2018,19(2):335. doi: 10.3390/ijms19020335
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期刊类型引用(19)
1. 李金金,杨钧翔,赵楠,吴迪,贾晓昱,张鹏,李江阔. 1-甲基环丙烯结合生物保鲜剂对鲜切甘蓝保鲜效果的影响. 食品与发酵工业. 2024(02): 159-167 . 百度学术
2. 林帆,王利强. 采后绿色蔬菜保鲜护绿技术研究进展. 中国食品学报. 2023(03): 416-427 . 百度学术
3. 谢志新,庄梅琳,陈琳琳,黄幼霞,张文州. 茶多酚-橘皮精油复合抗菌液对阳光玫瑰葡萄保鲜效果的研究. 中国食品添加剂. 2023(04): 304-312 . 百度学术
4. 刘忠,徐艳,朱荣耀,赵志强. 纳米银的制备及其应用研究进展. 天津科技大学学报. 2023(02): 75-80 . 百度学术
5. 马彩霞,闫亚美,米佳,禄璐,曹有龙,张渌淘,张曦燕. 生物保鲜技术在果蔬中的应用与发展. 宁夏农林科技. 2023(02): 20-24+38 . 百度学术
6. 王海艳,田国奎,王立春,李凤云,潘阳,庞泽,丁凯鑫,郝智勇. 鲜切马铃薯加工及货架期品质控制的研究进展. 中国瓜菜. 2023(10): 10-15 . 百度学术
7. 庄孝东,白森萌,李博彦,胡翠英,王靖,英晓莉,鞠鑫,扶教龙,李良智. ε-聚赖氨酸微生物生产及其应用研究进展. 中国抗生素杂志. 2023(10): 1081-1095 . 百度学术
8. 钱井,郑鄢燕,李蔚,满杰,郑丽静,韦强,赵立群. 1-甲基环丙烯结合寡雄腐霉菌对番茄贮藏品质的影响. 食品科技. 2023(09): 23-29 . 百度学术
9. 裴诺,施文正,汪之和. 壳聚糖与生物保鲜剂复合使用在水产品保鲜中的研究进展. 食品工业科技. 2022(05): 448-454 . 本站查看
10. 马璟,李蔚然,王丽杰,郝月薪,胡泳华,李娟,陈巧玲. 柠檬汁纳米银抗菌复合膜的制备工艺优化及性能研究. 食品工业科技. 2022(08): 31-40 . 本站查看
11. 荣培秀,何晓琴,王金秋,甘人友. 植物精油的功能特性及在果蔬保鲜中的应用. 食品与机械. 2022(05): 226-233+240 . 百度学术
12. 张娜. 微生物技术在果蔬防腐保鲜中的应用研究. 中国食品工业. 2022(13): 110-113 . 百度学术
13. 彭娜,赵鹏,柴新义. 食(药)用真菌的抑菌效果及其在食品防腐和保鲜中应用的研究进展. 食品工业科技. 2022(20): 421-429 . 本站查看
14. 舒祖菊,周斐,高宝善,黄思琦,赵瑞新,米李娜. PE膜协同茶多酚对圣女果品质的影响. 塑料. 2022(05): 121-125 . 百度学术
15. 李岩,吕海东,张正茂,陈意. 贮藏温度及壳聚糖涂膜处理对圣女果贮藏品质的影响. 湖北工程学院学报. 2022(06): 27-31 . 百度学术
16. 袁帅,王秀红,白春美,李荣超,孟德梅. ε-聚赖氨酸在果蔬采后贮藏保鲜中的应用研究进展. 食品研究与开发. 2021(17): 196-203 . 百度学术
17. 张晓媛,陆昭钰,蔡小瑜,李兴涛. 茶粕提取物对巨峰葡萄的采后保鲜效果研究. 赣南师范大学学报. 2021(06): 83-87 . 百度学术
18. 吕露. 物理技术在食品贮藏与果蔬保鲜中的应用探讨. 食品安全导刊. 2021(27): 121-122 . 百度学术
19. 李长滨,吴迪,张昱航. 生姜提取液对鲜切马铃薯贮藏品质的影响. 食品研究与开发. 2021(23): 1-6 . 百度学术
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